Ayuda
Ir al contenido

Dialnet


Regulaci贸n de las caracter铆sticas hidr谩ulicas de la ra铆z por jasmonato de metilo, especies de nitr贸geno reactivo y micorrizas arbusculares

  • Autores: Beatriz S谩nchez Romera
  • Directores de la Tesis: Juan Manuel Ruiz Lozano (codir. tes.), Ricardo Aroca 脕lvarez (codir. tes.)
  • Lectura: En la Universidad de Granada ( Espa帽a ) en 2014
  • Idioma: espa帽ol
  • Tribunal Calificador de la Tesis: Juan Jos茅 Irigoyen Iparrea (presid.), Noel A. Tejero Garc铆a (secret.), 脫scar Lorenzo S谩nchez (voc.), Ralf Kaldenhoff (voc.), Dolores Garrido Garrido (voc.)
  • Materias:
  • Enlaces
    • Tesis en acceso abierto en: DIGIBUG
  • Resumen
    • TITULO DE TESIS DOCTORAL: Regulaci贸n de las Caracter铆sticas Hidr谩ulicas de la Ra铆z por Jasmonato de Metilo, Especies de Nitr贸geno Reactivo y Micorrizas Arbusculares.

      AUTOR: Beatriz S谩nchez Romera.

      RESUMEN.

      Este trabajo de investigaci贸n est谩 enfocado al estudio de las propiedades hidr谩ulicas de la ra铆z, tanto a nivel molecular como a nivel fisiol贸gico y bajo dos reg铆menes de riego diferentes. Las plantas pueden establecer relaciones simbi贸ticas con organismos del suelo, que afectan la respuesta de las mismas frente a situaciones de estr茅s. A su vez, en dicha respuesta tambi茅n intervienen una serie de mol茅culas se帽al que act煤an estimulando la expresi贸n de genes y la s铆ntesis de prote铆nas. Entre esas mol茅culas se encuentran el 谩cido jasm贸nico (JA) y el 贸xido n铆trico (NO).

      Se conoce como el continuo suelo-planta-atmosfera a la ruta que sigue el agua desde el suelo hasta la atm贸sfera, pasando a trav茅s de los tejidos de la planta (Azcon-Bieto 2008). El agua, una vez absorbida por la ra铆z puede seguir tres v铆as, la apopl谩stica, la simpl谩stica y la transcelular. En la v铆a apopl谩stica el agua circula de forma continua a trav茅s de los poros de la pared celular. En la v铆a simpl谩stica, el movimiento de agua est谩 mediado por los plasmodesmos que conectan citoplasmas de c茅lulas adyacentes. Por 煤ltimo, la v铆a transcelular es aquella en la que el agua fluye a trav茅s de las membranas celulares por medio de las acuaporinas (AQP) (Steudle & Peterson 1998). Las acuaporinas son prote铆nas intr铆nsecas de membrana implicadas en el transporte pasivo de agua. Sin embargo, ni la v铆a simpl谩stica ni la v铆a transcelular pueden cuantificarse por separado por lo que, al conjunto de ambas se le denomina v铆a c茅lula a c茅lula (Steudle & Peterson 1998).

      Se conoce como conductividad hidr谩ulica de la ra铆z (L) a un par谩metro que estima la capacidad de transporte de agua de la ra铆z, el cual depende de la arquitectura de la ra铆z, de la v铆a predominante por la que circula el agua y de las propiedades de permeabilidad de las membranas biol贸gicas (Steudle & Peterson 1998; Steudle 2000; Sutka et al. 2011).

      Desde que se sabe que las acuaporinas est谩n implicadas en la regulaci贸n de L, numerosos estudios han sido llevados a cabo para conocer en detalle el papel concreto de estas prote铆nas (Javot et al. 2003; Postaire et al. 2010; Perrone et al. 2012). Existen diferentes tipos de acuaporinas, aunque las m谩s estudiadas son las prote铆nas intr铆nsecas de la membrana plasm谩tica (PIP) que, aunque se encuentran predominantemente en la membrana plasm谩tica, pueden tambi茅n situarse en las membranas celulares de otros org谩nulos como pueden ser la vacuola y el ret铆culo endoplasm谩tico (Maurel et al. 2008; Sorieul et al. 2011). Es sabido que la actividad de las acuaporinas es regulada por los niveles del pH citos贸lico (Gerbeau et al. 2002), por la concentraci贸n de cationes divalentes en el medio (Gerbeau et al. 2002; Alleva et al. 2006), por su estado de fosforilaci贸n (siendo su estado activo cuando la acuaporina est谩 fosforilada) (Johansson et al. 1996; Prak et al. 2008), por la formaci贸n de heterotetr谩meros entre diferentes isoformas de acuaporinas (Fetter et al. 2004), y tambi茅n ha sido observado una inactivaci贸n de las acuaporinas a trav茅s de su internalizaci贸n en ves铆culas (Boursiac et al. 2008).

      En condiciones de sequ铆a, el potencial h铆drico del suelo se hace tan negativo que las plantas disminuyen su capacidad de absorber agua, al mismo tiempo que la tasa de transpiraci贸n es reducida (Breda et al. 1995; Duursma et al. 2008), por lo que los valores de L son tambi茅n disminuidos (Trifilo et al. 2004; Aroca, Vernieri & Ruiz-Lozano 2008; Gao et al. 2010). Algunos estudios han demostrado que en condiciones de reducida transpiraci贸n la v铆a aplopl谩stica se ve disminuida, ganando mayor importancia el transporte de agua por la v铆a c茅lula a c茅lula, en la que est谩n implicadas las acuaporinas (Steudle & Peterson 1998; Javot & Maurel 2002). Sin embargo tambi茅n han sido observados resultados contradictorios (Siemens & Zwiazek 2003, 2004).

      Por otro lado, el 谩cido jasm贸nico (JA) es una hormona que ha sido ampliamente estudiada por su papel en la defensa frente al ataque de pat贸genos (Creelman & Mullet 1995; Glazebrook 2005). No obstante, tambi茅n se ha observado que est谩 implicada en la regulaci贸n del cierre estom谩tico (Hossain et al. 2011; Munemasa, Mori & Murata 2011), en el establecimiento de la simbiosis micorr铆cico arbuscular (Hause et al. 2002) y en la tolerancia de la planta frente a varios estreses abi贸ticos como sequ铆a, fr铆o o salinidad (Lee, Parthier & Lobler 1996; Ismail, Riemann & Nick 2012; de Ollas et al. 2013). Sin embargo, no existe ninguna informaci贸n sobre el efecto regulador de JA o del jasmonato de metilo (MeJA, un compuesto derivado del JA) sobre la conductividad hidr谩ulica de la ra铆z (L) y sobre la expresi贸n y abundancia de las acuaporinas.

      El 贸xido n铆trico (NO) forma parte de las conocidas como especies de nitr贸geno reactivo, las cuales est谩n implicadas en la se帽alizaci贸n celular, cuando se encuentran a bajas concentraciones en las c茅lulas, y como agentes oxidantes, cuando son producidos como consecuencia de situaciones de estr茅s (Corpas et al. 2004; Corpas et al. 2011). Por ello, hay estudios donde una dosis adecuada de un donador de NO, como puede ser el nitroprusito s贸dico (SNP) puede tener un efecto beneficioso en plantas sometidas a estreses abi贸ticos, aumentando la actividad de enzimas antioxidantes (Lamattina et al. 2003; Lamotte et al. 2005; Barroso et al. 2006; Zheng et al. 2009). Sin embargo, cuando el estr茅s es severo los mecanismos antioxidantes de la planta no pueden hacer frente a los da帽os ocasionados por el NO sobre prote铆nas, las cuales dejan de ser funcionales (nitraci贸n de prote铆nas) (Cecconi et al. 2009; Galetskiy et al. 2011; Lozano-Juste, Colom-Moreno & Leon 2011). En relaci贸n con las propiedades hidr谩ulicas de la ra铆z, s贸lo existe un trabajo donde se observ贸 un aumento de la expresi贸n de cuatro acuaporinas de la membrana plasm谩tica (PIPs) despu茅s de una aplicaci贸n ex贸gena de SNP (Liu et al. 2007).

      Otro de los mecanismos que las plantas emplean para superar situaciones de estr茅s consiste en establecer relaciones simbi贸ticas con hongos micorr铆cico arbusculares (MA) (Smith & Read 2008). Estos hongos penetran en el interior de las ra铆ces de las plantas y permiten un intercambio de nutrientes y agua entre el hongo y la planta, concretamente el hongo proporciona nutrientes y agua a la planta y 茅sta le suministra fotoasimilados (Pfeffer et al. 2004; Smith & Read 2008; Smith et al. 2011). Se sabe que los hongos MA proporcionan un mayor aporte de nutrientes y agua a la planta debido a que sus hifas pueden llegar a poros del suelo que son inaccesibles para las ra铆ces de las plantas (Ho & Trappe 1975; Allen, Moore & Christensen 1982; Faber et al. 1991). Del mismo, modo se ha observado que dicha simbiosis proporciona una mejora de la planta cuando 茅sta est谩 sometida a situaciones de estr茅s ya que aumenta la actividad de enzimas antioxidantes como son la super贸xido dismutasa (SOD) y la catalasa (CAT) (Palma et al. 1993; Ruiz-Lozano, Azcon & Palma 1996; Porcel, Barea & Ruiz-Lozano 2003; Sohrabi et al. 2012), as铆 como la acumulaci贸n de compuestos osmoprotectores como la prolina (Ruiz-Lozano, Gomez & Azcon 1995; Jahromi et al. 2008).

      En el caso de la simbiosis MA, varios estudios han sido realizados con el objeto de estudiar su papel en la regulaci贸n de las propiedades hidr谩ulicas de la ra铆z (Ruiz-Lozano et al. 2009; Barzana et al. 2012). Marulanda et al. (2003) observ贸 que dos hongos MA mejoraban la absorci贸n de agua en la planta en condiciones de sequ铆a, pero que la estrategia seguida por cada uno de esos hongos fue diferente. En el caso de Funneliformis mosseae, disminuy贸 la abundancia y la expresi贸n g茅nica de acuaporinas PIPs. Sin embargo, Rhizophagus irregularis no tuvo efecto a nivel de acuaporinas (Porcel et al. 2006). Barzana et al. (2012) en un experimento con plantas de ma铆z, observaron que la simbiosis MA mejoraba el movimiento de agua a trav茅s de la ruta apopl谩stica tanto en condiciones 贸ptimas de riego como en condiciones de sequ铆a, del mismo modo que fue observada una disminuci贸n de la abundancia y expresi贸n de diversas acuaporinas (Porcel et al. 2006; Barzana et al. 2014). Tambi茅n, debemos de tener en cuenta la presencia de las acuaporinas propias del hongo. En el caso de R. irregularis se han encontrado tres acuaporinas diferentes, las cuales han mostrado un aumento de su expresi贸n g茅nica en condiciones de estr茅s (Aroca et al. 2009; Li et al. 2013) por lo que podr铆an contribuir al aumento de la absorci贸n del agua en la planta y, por tanto, en la regulaci贸n de L.

      Objetivos.

      El objetivo general de la tesis doctoral ha sido investigar el papel del 谩cido jasm贸nico (JA), el 贸xido n铆trico (NO) y la simbiosis micorr铆cico arbuscular (MA) en las propiedades hidr谩ulicas de la ra铆z en plantas sometidas a riego 贸ptimo y a condiciones de sequ铆a.

      Para lograr el objetivo general, los siguientes objetivos espec铆ficos fueron definidos e investigados a lo largo de los cap铆tulos presentados en esta tesis doctoral.

      1. Determinar el papel del JA en la regulaci贸n de las propiedades hidr谩ulicas de la ra铆z y la implicaci贸n del 谩cido absc铆sico y de iones calcio en esta regulaci贸n.

      2. Estudiar el efecto del NO y el JA en el establecimiento y funcionalidad de hongos MA.

      3. Analizar cambios en la expresi贸n y abundancia de acuaporinas causadas por el JA, el NO y los hongos MA en ra铆ces de plantas sometidas a condiciones de riego 贸ptimo y a sequ铆a.

      4. Determinar el papel del JA y el NO en las propiedades hidr谩ulicas de la ra铆z en plantas sometidas a riego 贸ptimo y a sequ铆a.

      Cap铆tulo 1. Aumento de la conductividad hidr谩ulica de la ra铆z por metil jasmonato (MeJA) y el papel del calcio y el 谩cido absc铆sico en este proceso.

      En este cap铆tulo se realizaron varios experimentos en condiciones de hidropon铆a con diferentes tipos de plantas con el fin de constatar el papel del MeJA en la regulaci贸n de L.

      A lo largo de este cap铆tulo se determin贸 que una aplicaci贸n ex贸gena de 100碌M de MeJA incrementaba los valores de L en tres tipos de plantas diferentes (alubia, tomate y Arabidopsis). Adem谩s, se observ贸 que plantas de tomate deficientes en la acumulaci贸n de JA (def-1) disminuyeron L con respecto a plantas silvestres (WT), y que tras una aplicaci贸n ex贸gena de MeJA incrementaban los valores de L, aunque no se consigui贸 restaurar por completo los valores obtenidos en plantas WT.

      Como L est谩 parcialmente regulada por las acuaporinas (Javot et al. 2003; Postaire et al. 2010; Perrone et al. 2012). Se procedi贸 a la cuantificaci贸n de la expresi贸n y abundancia de algunas acuaporinas. Las medidas de la expresi贸n de genes de acuaporinas fueron analizadas por medio de RT-PCR cuantitativa en tiempo real tanto a 1 como a 24 horas tras la aplicaci贸n de MeJA. Los resultaron mostraron que tras 1 hora, dos de las seis acuaporinas analizadas disminuyeron su expresi贸n (PvPIP1;2 y PvPIP2;2) y que s贸lo una fue incrementada (PvPIP2;2). Resultados similares fueron encontrados a las 24 horas, donde dos acuaporinas de seis redujeron su expresi贸n (PvPIP1;3 y PvPIP2;1) y una fue incrementada (PvPIP2;3).

      Las concentraciones de PIP1, PIP2 y PIP2PH (PIP2 fosforilada en una serina situada en la posici贸n Ser-280) fueron analizadas por t茅cnicas de inmunoensayo. Destacando un aumento de la concentraci贸n de PIP2PH causado por la aplicaci贸n ex贸gena de MeJA a 1 y 24 horas adem谩s de un aumento de la concentraci贸n de la PIP2 a las 24 horas. Tambi茅n fueron usadas varias l铆neas de plantas de Arabidopsis con acuaporinas marcadas con fluorescencia (GFP-PIP1;1, GFP-PIP1;2, GFP-PIP2;2). Los resultados mostraron un aumento de la abundancia en la membrana plasm谩tica de PIP1;2 y PIP2;2 tras la aplicaci贸n de MeJA, por el contrario la PIP1;1 fue reducida.

      En segundo lugar, se quiso comprobar la implicaci贸n del calcio y del 谩cido absc铆sico (ABA, hormona implicada en la regulaci贸n de L (Ruiz-Lozano et al. 2009) y en el cierre estom谩tico (Hossain et al. 2011) en la ruta de regulaci贸n de L por MeJA. Por un lado observamos un incremento de calcio citos贸lico tras la aplicaci贸n de MeJA en plantas de alubia tras 24 horas de exposici贸n. Un quelante de calcio (谩cido bis (2-aminoetil) etilenoglicol-N,N,N',N'-tetraac茅tico, EGTA) y dos bloqueadores de canales de calcio fueron usados (cloruro de lantano (LaCL3) y heparina) para comprobar el papel del calcio en la respuesta del MeJA sobre L. Aunque el EGTA no tuvo efecto significativo sobre L, el LaCl3, que inhibe canales de calcio de la membrana plasm谩tica, redujo el incremento de L originado por MeJA, pero dicha disminuci贸n fue m谩s acusada en plantas tratadas con heparina, que es un bloqueador espec铆fico de los canales de calcio mediado por IP3.

      En cuanto al papel del ABA en la respuesta de MeJA sobre L. Experimentos en alubia con fluoridona (inhibidor de la s铆ntesis de ABA) y plantas de tomate deficientes en ABA (sitiens:(Taylor et al. 1988) mostraron que el incremento de L por MeJA va acompa帽ado por un incremento en la concentraci贸n de ABA, sin embargo en ausencia de ABA, el MeJA puede incrementar L, luego estimamos que existen dos v铆as por las cuales las plantas regulan L, una de las cuales es dependiente de ABA y otra que es independiente.

      Capitulo 2: La simbiosis micorr铆cico arbuscular y el jasmonato de metilo evitan la reducci贸n de la conductividad hidr谩ulica de la ra铆z causada por la sequ铆a.

      El objetivo de este estudio fue analizar las variaciones que el MeJA puede producir en L y en la expresi贸n y abundancia de las acuaporinas en plantas de P.vulgaris crecidas en macetas con suelo en condiciones de invernadero, sometidas a dos reg铆menes h铆dricos (riego 贸ptimo y sequ铆a) e inoculadas o no con un hongo MA. En total hab铆a 8 tratamientos, resultado de la combinaci贸n de tres factores. Factor biol贸gico, donde la mitad de las plantas no estaban inoculadas y la otra mitad estaban inoculadas con el hongo MA Rhizophagus irregularis. Factor qu铆mico, donde hubo plantas sometidas a tres aplicaciones de 200碌M de MeJA durante la 煤ltima semana antes de la cosecha y plantas no tratadas. Y por 煤ltimo un factor abi贸tico que consisti贸 en someter a la mitad de las plantas a un r茅gimen de sequ铆a durante la 煤ltima semana antes de la cosecha, mientras el resto de las plantas fueron regadas manteniendo su capacidad de campo.

      Entre los resultados m谩s relevantes, destacar que ninguno de los tratamientos tuvo efecto en la capacidad colonizadora del hongo MA, del mismo modo que no tuvieron ninguna repercusi贸n en el crecimiento de las plantas. Los valores de L mostraron que la simbiosis MA disminuy贸 L en condiciones de riego 贸ptimo mientras que la aument贸 en condiciones de sequ铆a. 脡ste 煤ltimo hecho puede estar relacionado con un incremento de la expresi贸n de dos acuaporinas f煤ngicas (GintAQP1 y GintAQPF2). Adem谩s la simbiosis MA mejor贸 el contenido h铆drico relativo independientemente del r茅gimen h铆drico al que estaba sometida la planta.

      En cuanto al papel desempe帽ado por las acuaporinas de la planta. La expresi贸n de PvPIP1;2 disminuy贸 en plantas MA en condiciones de riego 贸ptimo. En combinaci贸n con MeJA se observ贸 un incremento de la expresi贸n de la PvPIP2;1 y PvPIP2;2 en condiciones de sequ铆a. Por el contrario, el MeJA solo increment贸 la expresi贸n de PvPIP1;2 en plantas no MA en condiciones de riego 贸ptimo. En sequ铆a, el MeJA increment贸 la expresi贸n de PvPIP1;3 en plantas no MA y PvPIP2;1 en plantas MA, en cambio disminuy贸 la expresi贸n de PvPIP2;2 en las no AM. Por otro lado, s贸lo la abundancia de la PIP2PH mostr贸 diferencias significativas entre los tratamientos, destacando una disminuci贸n de su abundancia en plantas MA en condiciones de riego 贸ptimo y un aumento de su concentraci贸n por la aplicaci贸n de MeJA en condiciones de sequ铆a. El conjunto de resultados mostr贸 una correlaci贸n positiva entre los resultados de L y la abundancia de PIP2PH.

      Por 煤ltimo, se determin贸 la concentraci贸n de varias hormonas como el metil jasmonato (MeJA), el 谩cido jasm贸nico (JA), el metil salicilato (MeSA), el 谩cido salic铆lico (SA), el 谩cido indolacetico (AIA) y el 谩cido absc铆sico (ABA) en cada uno de los tratamientos con el fin de ver su implicaci贸n en el papel regulador del MeJA sobre L y la simbiosis MA. Los resultados m谩s destacados fueron, un aumento de AIA en las plantas MA, el cual no fue afectado ni por el r茅gimen h铆drico ni por la aplicaci贸n de MeJA. Adem谩s se observ贸 un aumento de la concentraci贸n de ABA s贸lo en plantas sometidas a sequ铆a y un incremento del contenido de SA en plantas no tratadas ni micorrizadas en condiciones de sequ铆a.

      Cap铆tulo 3: Implicaci贸n de la mutaci贸n def-1 en la regulaci贸n de la conductividad hidr谩ulica de la ra铆z por hongos micorr铆cico arbusculares.

      El objetivo de este cap铆tulo fue investigar la implicaci贸n del contenido end贸geno de JA de la planta hospedadora en la actividad reguladora de hongos MA sobre L bajo condiciones 贸ptimas de riego y sequ铆a. Por eso, plantas mutantes de tomate deficientes en la s铆ntesis de JA (def-1:(Howe et al. 1996) y plantas silvestres (WT) fueron crecidas en invernadero, con y sin la inoculaci贸n de R. irregularis, como hongo MA, y sometidas a dos reg铆menes h铆dricos (riego 贸ptimo y sequ铆a).

      El dise帽o experimental est谩 compuesto por tres factores. Factor biol贸gico, consistente en plantas inoculadas con el hongo MA y sin inocular. Factor genot铆pico, el cual es definido por el uso de plantas WT y plantas mutantes (def-1) y un factor abi贸tico, donde las plantas tuvieron un riego controlado durante 10 d铆as antes de realizarse la cosecha, siendo la mitad de las plantas regadas hasta su capacidad de campo 贸ptima y la otra mitad hasta un 60% de su capacidad de campo.

      Los resultados mostraron que ni la sequ铆a ni el genotipo de la planta tuvieron efecto sobre la capacidad colonizadora del hongo MA, aunque si fue observada una disminuci贸n de la parte a茅rea en plantas MA en condiciones de sequ铆a.

      En cuanto a L, las plantas def-1 obtuvieron valores mayores de L que las plantas WT en condiciones de riego 贸ptimo, y la simbiosis MA mantuvo valores elevados de L independientemente del genotipo de la planta y del r茅gimen h铆drico establecido. Adem谩s, la simbiosis MA redujo el contenido h铆drico relativo e increment贸 la conductancia estom谩tica (gs) en condiciones de sequ铆a. Por el contrario, las plantas def-1 s贸lo incrementaron gs en condiciones de sequ铆a. En relaci贸n a las acuaporinas f煤ngicas, solo se observ贸 un incremento en una de ellas en plantas def-1 en condiciones de riego 贸ptimo. Por el contrario, ocho genes de acuaporinas fueron analizados, y los resultados no mostraron un patr贸n claro de regulaci贸n por hongos MA, genotipo o r茅gimen h铆drico. Destacar que la sequ铆a disminuy贸 la expresi贸n de SlPIP1;1 en todos los tratamientos excepto en plantas MA-WT. Las plantas def-1 aumentaron la expresi贸n de SlPIP1;7, aunque dicho aumento fue reducido en presencia de hongos MA. En cuanto a la expresi贸n de acuaporinas PIP2, la expresi贸n de SlPIP2;1, SlPIP2;8 y SlPIP2;9 fue mayor en plantas def-1 no MA en condiciones de riego 贸ptimo. Por otro lado, la simbiosis MA disminuy贸 la expresi贸n de SlPIP2;4 y SlPIP2;6 en plantas WT y SlPIP2;1, SlPIP2;6, SlPIP2;8 y SlPIP2;9 en plantas def-1 en condiciones 贸ptimas de riego. En sequ铆a sin embargo, la 煤nica diferencia fue un aumento de la expresi贸n de SlPIP2;6 y SlPIP2;9 en plantas WT MA con respecto a las no MA.

      Los resultados de abundancia de acuaporinas mostraron que la abundancia de PIP1 no fue alterada por ninguno de los tratamientos y que en plantas MA en condiciones de riego 贸ptimo disminuy贸 la concentraci贸n de PIP2 independientemente del genotipo de la planta. La abundancia de la PIP2PH tambi茅n fue disminuida por la simbiosis MA en todos los tratamientos, excepto en plantas def-1 sometidas a buen riego. Adem谩s, en condiciones de buen riego las plantas def-1 tambi茅n redujeron la concentraci贸n de PIP2PH con respecto plantas WT.

      Por 煤ltimo, destacar un aumento de AIA y MeSA en todos los tratamientos con plantas MA, a excepci贸n de plantas def-1 en condiciones de riego 贸ptimo donde la concentraci贸n de MeSA ya era mayor que en las plantas WT sin micorrizar. Por otro lado, el contenido de ABA tambi茅n fue mayor en plantas MA en condiciones de riego 贸ptimo, y el contenido de SA fue aumentado en todos los tratamientos de sequ铆a, siendo incrementado aun m谩s por la presencia de hongos MA.

      Cap铆tulo 4: Efecto del SNP (donador de NO) y L-NAME (un inhibidor de la s铆ntesis de NO) en la regulaci贸n de la respuesta de la planta a la sequ铆a por hongos micorr铆cico arbusculares.

      El objetivo de este cap铆tulo fue investigar la posible implicaci贸n del NO en la regulaci贸n de la respuesta de las plantas a la sequ铆a y L por la simbiosis MA. Para ello, plantas de lechuga (Lactuca sativa L.) inoculadas o no con R. irregularis y sometidas a dos reg铆menes h铆dricos fueron tratadas con un donador de NO (SNP) y un inhibidor de la s铆ntesis de NO (L-NAME) .

      El dise帽o experimental estuvo compuesto por tres factores cuya combinaci贸n dio lugar a 12 tratamientos diferentes. Factor biol贸gico, determinado por la presencia del hongo MA. Factor qu铆mico, con plantas tratadas con SNP (50碌M), plantas tratadas con L-NAME (100碌M) y plantas sin tratar. Por 煤ltimo un factor abi贸tico, donde la mitad de las plantas fueron sometidas a un periodo de sequ铆a de una semana antes de la cosecha, mientras que el resto fueron regadas manteniendo 贸ptima su capacidad de campo.

      Los resultados mostraron que el tratamiento con L-NAME fue el 煤nico que mejor贸 la capacidad colonizadora del hongo MA y mejor贸 la conductancia estom谩tica, independientemente del r茅gimen h铆drico. Mientras que el SNP disminuy贸 el crecimiento de la parte a茅rea de las plantas, la conductancia estom谩tica y el contenido de clorofilas en plantas en condiciones de riego 贸ptimo, y aument贸 el porcentaje de hojas amarillas.

      En cuanto a las propiedades hidr谩ulicas de la ra铆z, se observ贸 que la micorriza mejor贸 la absorci贸n de agua en plantas sometidas a sequ铆a, excepto en las plantas tratadas con L-NAME donde fue aumentada en condiciones de riego 贸ptimo. El SNP redujo la absorci贸n de agua en condiciones de riego 贸ptimo y redujo el RWC en condiciones de sequ铆a. L fue incrementada por L-NAME en plantas no MA en condiciones 贸ptimas de riego. Sin embargo en condiciones de sequ铆a, los valores de L en plantas MA tratadas con SNP fueron tan reducidos que no se pudo cuantificar. En este experimento s贸lo se llev贸 a cabo la cuantificaci贸n de la abundancia y expresi贸n g茅nica de las acuaporinas PIP1. Los resultados muestran que las plantas MA redujeron la expresi贸n de LsPIP1 independientemente del tratamiento qu铆mico y r茅gimen h铆drico. Los tratamientos SNP y L-NAME redujeron su expresi贸n en condiciones de riego 贸ptimo, especialmente en plantas MA. La mayor acumulaci贸n de PIP1 se dio en el tratamiento con SNP en plantas no MA en condiciones de riego 贸ptimo, aunque las plantas MA tratadas con SNP mostraron niveles m谩s bajos de PIP1. Adem谩s, en condiciones de sequ铆a las plantas no MA mostraron mayor abundancia de PIP1 que las plantas MA, a excepci贸n de las plantas tratadas con L-NAME donde el efecto opuesto fue observado.

      Discusi贸n.

      El objetivo de los diferentes estudios incluidos en esta Tesis doctoral fue investigar, tanto a nivel molecular como a nivel fisiol贸gico, la implicaci贸n de mol茅culas se帽al tales como NO y JA en la regulaci贸n de L. Del mismo modo, se ha investigado c贸mo la simbiosis MA modulaba el efecto de estas mol茅culas sobre L bajo dos reg铆menes h铆dricos.

      Efecto del MeJA sobre L.

      Existen evidencias experimentales que demuestran que el MeJA modula la apertura estom谩tica (Hossain et al. 2011; Akter et al. 2012), pero su efecto sobre L no hab铆a sido estudiado a煤n. Plantas de alubia, tomate y Arabidopsis crecidas en hidropon铆a fueron tratadas con MeJA y en todos ellas se observ贸 un incremento de L despu茅s del tratamiento. Es de destacar que plantas mutantes deficientes en JA (def-1 :(Howe et al. 1996; O'Donnell et al. 2003) mostraron valores menores de L que las plantas WT, aunque tambi茅n incrementaron L despu茅s de una aplicaci贸n de MeJA, pero no consiguieron alcanzar los valores de las plantas WT.

      En este estudio, intentamos aplicar los conocimientos adquiridos en los experimentos de cultivo hidrop贸nico a plantas crecidas en suelo en condiciones de invernadero. Los resultados obtenidos en plantas crecidas en suelo no mostraron el mismo patr贸n que los obtenidos previamente en condiciones de hidropon铆a. Espec铆ficamente, en condiciones de riego 贸ptimo la aplicaci贸n de MeJA no tuvo efecto en plantas de alubia y en el caso del tomate, los resultados obtenidos fueron opuestos a los conseguidos por esas mismas plantas en condiciones de hidropon铆a ya que las plantas def-1 mostraron mayor L que las plantas WT. Este hecho podr铆a ser resultado de cambios en la anatom铆a de la ra铆z, como fue demostrado por Matsuo et al. (2009), quienes encontraron diferentes valores de L en plantas de arroz dependiendo de las condiciones en las que fueron cultivadas (hidrop贸nico o en suelo). Es sabido que plantas crecidas en suelo generan dep贸sitos de suberina en sus ra铆ces, por lo que el agua debe fluir por la v铆a c茅lula a c茅lula (Zimmermann & Steudle 1998; Vandeleur et al. 2009). Ejemplos de ello han sido observados en plantas de arroz tratadas con sal, en donde los dep贸sitos de suberina disminuyeron el transporte de agua por la v铆a apopl谩stica (Schreiber, Franke & Hartmann 2005; Krishnamurthy et al. 2011; Ranathunge et al. 2011) y en plantas sometidas a bajas temperaturas, las cuales disminuyeron L como resultado de dep贸sitos de suberina en sus ra铆ces (Lee et al. 2005).

      Otro punto a considerar es que el m茅todo usado para la medida de L fue diferente en ambos tipos de experimentos. En alubias crecidas en suelo, el m茅todo de cuantificaci贸n usado fue el m茅todo de exudaci贸n libre el cual s贸lo cuantifica el transporte de agua por la v铆a c茅lula a c茅lula debido a que la tasa de transpiraci贸n es eliminada con la escisi贸n del tallo. En el experimento de tomate fue usado el m茅todo de medida de flujo de alta presi贸n (High Pressure Flow Meter, HPFM) para la cuantificaci贸n de L, el cual mide la suma del transporte de agua proveniente de la v铆a apopl谩stica y de la v铆a c茅lula a c茅lula. Sin embargo, en condiciones hidrop贸nicas varios m茅todos fueron contrastados, obteniendo resultados similares de L. Esto puede ser explicado bien porque ambas rutas contribuyen de forma equitativa o bien porque el aporte de agua proporcionado por la ruta apopl谩stica es muy peque帽o. Aunque en nuestros experimentos en invernadero no comprobamos el efecto de las t茅cnicas de medida de L utilizadas, Barzana et al. (2012) si observ贸 que dependiendo del m茅todo usado, los valores de L cambiaron para un mismo tipo de planta.

      En condiciones de sequ铆a, se observ贸 que plantas de alubia tratadas con MeJA incrementaron L, mientras que plantas def-1 mostraron valores similares a las WT. Lo que sugiere la pregunta de si el JA est谩 implicado en varias rutas de se帽alizaci贸n y si su efecto sobre L es la suma de todas ellas.

      Otra causa de por qu茅 los valores de los experimentos de plantas crecidas en condiciones de invernadero y plantas crecidas en condiciones hidrop贸nicas no pueden ser comparados, est谩 relacionado con el modo de aplicaci贸n de los tratamientos qu铆micos. En el caso de las plantas de alubia crecidas en suelo, el MeJA fue aplicado varias veces a lo largo de la semana. En contraste, en condiciones hidrop贸nicas, solo se realiz贸 una aplicaci贸n y las plantas fueron cosechadas tras 1 y 24 horas despu茅s de la aplicaci贸n. Por lo tanto, consideramos que los resultados obtenidos en plantas crecidas en suelo fueron debidos a un efecto de resistencia de estas plantas m谩s que a un efecto inmediato que el MeJA pueda causar sobre L. Adem谩s, en condiciones de sequ铆a observamos un incremento de L debido a la aplicaci贸n de MeJA y consideramos que puede ser debido a un incremento en la resistencia de la planta frente al estr茅s, como ha sido previamente demostrado (Anjum et al. 2011; de Ollas et al. 2013). Anjum et al. (2011) observaron que una aplicaci贸n de MeJA en plantas de soja increment贸 las actividades enzim谩ticas SOD y CAT, y el contenido de prolina (un osmoregulador) en condiciones de sequ铆a, adem谩s de mejorar el estado h铆drico de la planta. Por lo tanto, seg煤n nuestros resultados, plantas tratadas con MeJA podr铆an estar mejor preparadas para soportar condiciones de estr茅s, aunque el tratamiento no reflejara dicho efecto sobre L. Una evidencia de ello fue que las plantas crecidas en sequ铆a y tratadas con MeJA fueron capaces de mantener valores de L similares a las plantas crecidas en condiciones de riego 贸ptimo.

      Finalmente, plantas deficientes en JA (def-1) tuvieron una mayor L que plantas WT en condiciones de riego 贸ptimo. En contraste, bajo condiciones de sequ铆a no se observ贸 ninguna diferencia en L entre estos dos tipos de plantas. Sugerimos que este resultado fue debido a que la mutaci贸n def-1 podr铆a causar una situaci贸n de estr茅s similar al estado de estr茅s causado por la sequ铆a en plantas WT.

      Ruta de se帽alizaci贸n del MeJA.

      En este estudio, hemos intentado elucidar por primera vez la ruta de se帽alizaci贸n implicada en la regulaci贸n de L por MeJA. Se ha observado que el MeJA act煤a junto con el ABA y el ion calcio en la regulaci贸n de L, como previamente fue descrito para la regulaci贸n estom谩tica (Islam et al. 2010; Hossain et al. 2011; Munemasa et al. 2011). De forma similar al MeJA, una aplicaci贸n externa de ABA tambi茅n puede incrementar L (Aroca et al. 2008; Ruiz-Lozano et al. 2009; Kudoyarova et al. 2011). Sin embargo, otros estudios mostraron resultados opuestos (Beaudette et al. 2007). No obstante, L es conocida por ser corregulada por otras hormonas tales como el etileno, cuyos resultados tambi茅n han sido contradictorios (Islam, MacDonald & Zwiazek 2003), SA, el cual es conocido por inhibir L (Boursiac et al. 2008) y el AIA, cuyo efecto ha sido observado a nivel de acuaporinas y L (Peret et al. 2012). Adem谩s, estudios previos han descrito la acci贸n conjunta de ABA y JA en varios procesos tales como defensa frente al ataque de pat贸genos y en la regulaci贸n estom谩tica (Garcia-Andrade et al. 2011; Munemasa et al. 2011). Ha sido en este 煤ltimo estudio donde fue encontrado que la respuesta al JA fue el resultado de la actuaci贸n de dos rutas de se帽alizaci贸n simult谩neas, una de las cuales fue dependiente de ABA y otra fue independiente de ABA (Hossain et al. 2011). El mismo tipo de regulaci贸n ha sido observado en nuestro trabajo donde el efecto del MeJA sobre L fue en parte regulado por ABA y en parte independiente de ABA. Sin embargo, De Ollas et al. (2013) observ贸 que el contenido de JA deb铆a ser acumulado previamente para que tuviera lugar un incremento de la concentraci贸n de ABA en las ra铆ces en condiciones de sequ铆a.

      Por otro lado, Sun et al. (2009) observaron un incremento en la concentraci贸n de calcio citos贸lico en respuesta a una aplicaci贸n ex贸gena de MeJA, con el fin de comenzar una ruta de se帽alizaci贸n que podr铆a resultar en un incremento de la expresi贸n de genes, s铆ntesis de prote铆nas o de modificaciones postraduccionales de prote铆nas. Del mismo modo, nuestros resultados mostraron que la mejora de L causada por MeJA podr铆a ser mediada por la movilizaci贸n de calcio proveniente de almacenamientos internos, concretamente de aquellos con canales de calcio dependientes de IP3, los cuales est谩n localizados en el ret铆culo endoplasm谩tico y en el tonoplasto y son inhibidos por la heparina (White 2000; Poutrain et al. 2009; Sun et al. 2009).

      Papel de la simbiosis MA en el estado h铆drico de la planta.

      La simbiosis MA proporciona a la planta hospedadora varias ventajas que le permiten sobrevivir y tolerar mejor las condiciones de estr茅s. Por ejemplo, los hongos MA son capaces de captar el agua del suelo que es inaccesible para las ra铆ces de las plantas y regulan la tasa de transpiraci贸n (Allen 1991; Faber et al. 1991; Ebel et al. 1997). Por lo tanto, la simbiosis MA ha sido ampliamente estudiada en una gran variedad de plantas y frente a varios estreses abi贸ticos.

      En nuestros experimentos, en primer lugar notamos que ni el JA ni la sequ铆a afectaron al porcentaje de micorrizaci贸n. Sin embargo, un inhibidor de la s铆ntesis de NO (L-NAME) increment贸 la efectividad de colonizaci贸n f煤ngica. Calcagno et al. (2012) observ贸 un incremento de los niveles de NO en la ra铆z durante la fase inicial de colonizaci贸n por hongos MA. Sin embargo, este incremento puede ser transitorio y mantenerlo podr铆a causar una inhibici贸n de la proliferaci贸n de hifas del hongo como ocurri贸 cuando en este estudio a帽adimos L-NAME durante un largo periodo de exposici贸n. A pesar de la falta de respuesta del MeJA en nuestro trabajo, otros estudios mostraron resultados contradictorios. Por un lado, hay estudios donde se observ贸 un incremento en la concentraci贸n de JA en plantas MA y espec铆ficamente en las c茅lulas que conten铆an arb煤sculos (Hause et al. 2002). Por el contrario, Isayenkov et al. (2005) encontraron que bajos niveles de JA disminuyeron la tasa de micorrizaci贸n y la formaci贸n de arb煤sculos. Ludwing-Muller et al. (2002) observ贸 una reducci贸n de la colonizaci贸n f煤ngica despu茅s de una aplicaci贸n ex贸gena de MeJA y en consecuencia se redujo el n煤mero de arb煤sculos (Herrera-Medina et al. 2008). Por lo tanto, nosotros consideramos que el JA est谩 implicado en el establecimiento y desarrollo de la simbiosis, pero su efecto podr铆a variar dependiendo del tipo de planta y de las condiciones ambientales.

      A nivel de biomasa, las tres especies de plantas analizadas no mostraron una mejora significativa en el crecimiento causado por la simbiosis MA. De hecho, plantas de tomate MA crecidas en condiciones de sequ铆a fueron m谩s peque帽as que las no MA. As铆 en la presente tesis, el efecto promotor del crecimiento por la simbiosis MA observado normalmente (Ruiz-Lozano et al. 2009; El-Mesbahi et al. 2012), no fue conseguido en este trabajo. Una posible explicaci贸n puede ser que la planta no sufriera limitaci贸n nutricional y, por lo tanto, los efectos nutricionales del hongo no se hicieran notar. De hecho, como se ha observado previamente, elevadas concentraciones de f贸sforo en el suelo reducen la capacidad colonizadora del hongo, la cual es mejorada cuando la concentraci贸n del f贸sforo en el suelo es limitada (Smith & Read 2008).

      En relaci贸n con L, la presencia de hongos MA la increment贸 en plantas de tomate (WT) y la disminuy贸 en plantas de alubia en condiciones de riego 贸ptimo, aunque nosotros debemos tener en cuenta que el m茅todo de medida de L fue diferente en cada experimento. Sin embargo, los hongos MA mejoraron L en ambas plantas en condiciones de sequ铆a, como hab铆a sido descrito previamente (Barzana et al. 2012; El-Mesbahi et al. 2012). Por otro lado, en plantas de lechuga, los hongos MA no tuvieron efecto sobre L. Sin embargo, en el tratamiento de SNP el transporte de agua por la v铆a c茅lula a c茅lula fue inhibido completamente en condiciones de sequ铆a en plantas MA. Por lo tanto, los niveles end贸genos de NO podr铆an afectar tanto a la colonizaci贸n del hongo como a la regulaci贸n de L por el mismo.

      Regulaci贸n de las acuaporinas por MeJA, hongos MA, sequ铆a y NO.

      La regulaci贸n de las acuaporinas por los diferentes tratamientos sigui贸 un patr贸n complejo. En el caso de plantas de alubias crecidas en hidrop贸nico s贸lo tres de seis acuaporinas fueron reguladas por la aplicaci贸n de MeJA, dos de ellas disminuyeron su expresi贸n y s贸lo una la increment贸.

      En plantas de alubia crecidas en suelo en condiciones de riego 贸ptimo, cinco de seis genes de acuaporinas no fueron afectados por el tratamiento con MeJA, y cinco de ocho genes tampoco cambiaron en plantas de tomate def-1. Del mismo modo, en plantas sometidas a sequ铆a, cuatro de seis genes en plantas de alubia y seis de ocho genes en plantas de tomate permanecieron inalterados. Luego, podr铆amos decir que el papel del JA es limitado a nivel de regulaci贸n en la expresi贸n g茅nica de acuaporinas.

      En cuanto a la abundancia de acuaporinas, el MeJA tuvo mayor efecto. Ejemplo de ello fue observado cuando plantas de arabidosis que expresaban acuaporinas marcadas con GFP mostraron una disminuci贸n en la abundancia de PIP1;1 en la membrana plasm谩tica tras la aplicaci贸n de MeJA y un incremento en la abundancia de PIP1;2 y PIP2;2. Estudios previos han confirmado que la presencia de heterotetr谩meros con PIP1;2 y PIP 2;5 fueron capaces de incrementar los valores de permeabilidad de la membrana en ovocitos de Xenopus laevis. Por otro lado, PIP1;1 tiende a ser internalizado en ves铆culas y en el interior del ret铆culo endoplasm谩tico bajo condiciones de estr茅s o cuando est谩n inactivas (Boursiac et al. 2008). En general, PIP1;1 es conocida por transportar menor cantidad de agua que la PIP 1;2 y la PIP 2;2 (Fetter et al. 2004; Zelazny et al. 2007).

      Es importante destacar que el MeJA act煤a principalmente en la regulaci贸n del estado de fosforilaci贸n de las acuaporinas PIP2s (PIP2PH) ya que es sabido que la fosforilaci贸n en la Ser-280 proporciona un estado activado de las acuaporinas que permite el transporte de agua (Johansson et al. 1998). En nuestros resultados, la abundancia de PIP2PH fue mayor en plantas tratadas con MeJA en condiciones hidrop贸nicas. En plantas de alubias crecidas en condiciones de invernadero, la abundancia de la PIP2PH disminuy贸 en condiciones de sequ铆a, aunque fue incrementada despu茅s de la aplicaci贸n de MeJA. Por 煤ltimo, en plantas de tomate crecidas en invernadero, las plantas deficientes en JA, redujeron la abundancia de PIP2PH en condiciones de riego 贸ptimo. En general, estos resultados sugieren que el MeJA est谩 implicado en la regulaci贸n del estado fosforilado de la Ser-280 en acuaporinas PIP2 y que 茅sta podr铆a ser su principal funci贸n en la regulaci贸n de L.

      La simbiosis MA es conocida por disminuir la expresi贸n y abundancia de la mayor铆a de las acuaporinas (Barzana et al. 2014). En nuestro estudio observamos que la concentraci贸n de PIP2 y PIP2PH fue reducida en plantas de tomate WT MA y la PIP2PH en plantas de alubia en condiciones de riego 贸ptimo. En cuanto a la expresi贸n g茅nica, PvPIP1;2 en alubia y SlPIP2;4 y SlPIP2;6 en tomate fueron reguladas negativamente por la simbiosis MA en condiciones de riego 贸ptimo. Sin embargo, seis genes de acuaporinas en tomate y cinco genes de acuaporinas en alubias se mantuvieron inalterados. En condiciones de sequ铆a, los resultados obtenidos siguieron diferentes patrones. Aunque no hubo cambios en la expresi贸n de acuaporinas en plantas de alubia, la expresi贸n g茅nica de tres de ocho genes fue incrementada en plantas de tomate MA. En el experimento realizado con plantas de lechuga, observamos que tanto la expresi贸n como la abundancia de PIP1 fueron reducidas por la simbiosis MA independientemente del r茅gimen h铆drico. De ese modo, y como estudios anteriores abalan (Aroca, Porcel & Ruiz-Lozano 2007), parece ser que cada gen de acuaporina tiene una respuesta espec铆fica para la simbiosis AM y para determinadas condiciones ambientales.

      En nuestro trabajo tambi茅n hemos tenido en cuenta el posible papel de las acuaporinas f煤ngicas en el transporte de agua hacia la planta. Concretamente, tres acuaporinas han sido descritas en Rhizophagus irregularis hasta la fecha (Aroca et al. 2009; Li et al. 2013). Nuestros resultados mostraron un aumento de la expresi贸n de dos genes cuando las plantas de alubia fueron sometidas a sequ铆a, estos resultados concuerda con aquellos encontrados por Aroca et al. (2009) y Li et al. (2013). Sin embargo, la sequ铆a no tuvo ning煤n efecto en el experimento de plantas de tomate, aunque cabe destacar un aumento de expresi贸n de una acuaporina f煤ngica (GintAQP1) en plantas def-1 en condiciones de riego 贸ptimo, la cual podr铆a ser regulada por los niveles end贸genos de JA que posee la planta.

      Los productos qu铆micos aplicados para cambiar la concentraci贸n end贸gena de NO (L-NAME y SNP) tambi茅n tuvieron un efecto en la abundancia y expresi贸n de acuaporinas. El efecto m谩s remarcable fue que ambos productos qu铆micos redujeron la expresi贸n de LsPIP1 y que el SNP increment贸 la abundancia de PIP1 en condiciones de riego 贸ptimo. Liu et al. (2013) observ贸 un aumento de la expresi贸n de cuatro genes de acuaporinas tras una aplicaci贸n de SNP y GSNO pero no existe m谩s informaci贸n sobre el efecto del NO sobre la expresi贸n de acuaporinas hasta el momento.

      Interacci贸n entre hormonas.

      Este es uno de los pocos estudios donde una variedad de hormonas ha sido analizada simult谩neamente con el fin de comprender las interacciones establecidas entre ellas. Considerando todos los resultados obtenidos, podemos enfatizar algunos aspectos que no han sido descritos previamente en la literatura. El primero es el incremento en los niveles de AIA observados en plantas de alubia y de tomate (WT) mediados por la micorrizaci贸n, el cual puede estar relacionado con una disminuci贸n en la expresi贸n de acuaporinas que es con frecuencia vinculado tanto a la presencia de hongos MA (Porcel et al. 2006; Barzana et al. 2014) como tambi茅n a una aplicaci贸n ex贸gena de AIA (Peret et al. 2012). Adem谩s, un incremento de AIA podr铆a ser una posible estrategia usada por las plantas micorrizadas para reducir el flujo de agua radial a trav茅s de la v铆a c茅lula a c茅lula e incrementar el flujo de agua a trav茅s de la v铆a apopl谩stica, favoreciendo una u otra ruta dependiendo de las condiciones ambientales presentes (Barzana et al. 2012).

      Tras la realizaci贸n de los an谩lisis de regresi贸n, observamos que exist铆a una correlaci贸n lineal positiva entre la concentraci贸n de MeSA y L, la cual no hab铆a sido descrita previamente. Del mismo modo, observamos que un incremento de la concentraci贸n de MeSA podr铆a regular negativamente la concentraci贸n de acuaporinas PIP1, un grupo de acuaporinas que es conocido por tener una menor capacidad transportadora de agua que las PIP2 (Fetter et al. 2004; Zelazny et al. 2007). Estos resultados sugieren la necesidad de llevar a cabo nuevos estudios que nos ayuden a comprender el papel de MeSA en la regulaci贸n de L y en la regulaci贸n de las acuaporinas.

      Finalmente, discutir el efecto observado sobre el SA. El papel m谩s importante de SA es su implicaci贸n en la resistencia sist茅mica adquirida contra estreses bi贸ticos (Forchetti et al. 2010; Donovan, Nabity & DeLucia 2013) y, en menor medida, contra estreses abi贸ticos (Farooq et al. 2009; Kang et al. 2013). Adem谩s, el SA es considerado una hormona con un efecto antag贸nico al del JA, aunque ambas hormonas podr铆an actuar conjuntamente en algunos procesos (Proietti et al. 2013). Aqu铆 observamos que plantas de alubia y tomate (WT) sometidas a sequ铆a mostraron elevados niveles de SA con respecto a las plantas que no fueron sometidas a condiciones de estr茅s. En el caso de plantas de alubia, una correlaci贸n negativa fue observada entre la concentraci贸n de SA y los valores de L. Esta interacci贸n puede ser explicada por la internalizaci贸n de acuaporinas en ves铆culas causadas por SA, como Boursiac et al. (2008) describi贸 anteriormente. Por lo tanto, sugerimos que las plantas micorrizadas y los niveles end贸genos de JA en la planta podr铆an regular el contenido de SA en la planta con el fin de tener un efecto sobre L.

      Conclusiones: 1. La aplicaci贸n de 100 驴M de MeJA increment贸 L en plantas de alubia, tomate y Arabidopsis en condiciones de hidropon铆a.

      2. El ABA y el calcio citos贸lico est谩n parcialmente implicados en la ruta de se帽alizaci贸n del JA implicada en la regulaci贸n de L.

      3. El JA disminuy贸 la expresi贸n de la mayor铆a de las acuaporinas. Por el contario, el JA increment贸 la concentraci贸n de la forma activa de las acuaporinas, aumentando la forforilaci贸n del residuo de serina situado en la posici贸n 280.

      4. El grado de colonizaci贸n radical por los hongos micorr铆cico arbusculares no fue afectado por JA. Sin embargo, el uso de un inhibidor de la s铆ntesis de NO si mejor贸 el grado de colonizaci贸n por los hongos micorr铆cico arbusculares.

      5. Un incremento en la concentraci贸n de AIA en las ra铆ces micorrizadas podr铆a ser responsable de la disminuci贸n en la expresi贸n y abundancia de acuaporinas asociadas con la simbiosis MA y el incremento de la circulaci贸n del agua por la via apopl谩stica.

      6. Plantas tratadas con MeJA y plantas inoculadas con Rhizophagus irregularis mejoraron los valores de L en condiciones de sequ铆a, probablemente como resultado de una regulaci贸n del contenido end贸geno de SA.

      7. El posible papel positivo del MeSA en la regulaci贸n de L y en la disminuci贸n de la cantidad de PIP1 es postulado por primera vez.

      Bibliograf铆a Akter N., Sobahan M.A., Uraji M., Ye W., Hossain M.A., Mori I.C., Nakamura Y. & Murata Y. (2012) Effects of depletion of glutathione on abscisic acid- and methyl jasmonate-induced stomatal closure in Arabidopsis thaliana. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 76, 2032-2037.

      Allen M.F. (1991) The ecology of mycorrhizae. Cambridge University Press.

      Allen M.F., Moore T.S. & Christensen M. (1982) Phytohormone changes in Bouteloua-Gracilis infected by vesicular mycorrhizae. 2. Altered level of gibberellin-like substances and abscisic acid in the host plant. Canadian Journal of Botany-Revue Canadienne De Botanique, 60, 468-471.

      Alleva K., Niemietz C.M., Maurel C., Parisi M., Tyerman S.D. & Amodeo G. (2006) Plasma membrane of Beta vulgaris storage root shows high water channel activity regulated by cytoplasmic pH and a dual range of calcium concentrations. Journal of Experimental Botany, 57, 609-621.

      Anjum S.A., Wang L., Farooq M., Khan I. & Xue L. (2011) Methyl jasmonate-induced alteration in lipid peroxidation, antioxidative defence system and yield in soybean under drought. Journal of Agronomy and Crop Science, 197, 296-301.

      Aroca R., Bago A., Sutka M., Paz J.A., Cano C., Amodeo G. & Ruiz-Lozano J.M. (2009) Expression analysis of the first arbuscular mycorrhizal fungi aquaporin described reveals concerted gene expression between salt-stressed and nonstressed mycelium. Molecular Plant-Microbe Interactions, 22, 1169-1178.

      Aroca R., Porcel R. & Ruiz-Lozano J.M. (2007) How does arbuscular mycorrhizal symbiosis regulate root hydraulic properties and plasma membrane aquaporins in Phaseolus vulgaris under drought, cold or salinity stresses?. New Phytologist, 173, 808-816.

      Aroca R., Vernieri P. & Ruiz-Lozano J.M. (2008) Mycorrhizal and non-mycorrhizal Lactuca sativa plants exhibit contrasting responses to exogenous ABA during drought stress and recovery. Journal of Experimental Botany, 59, 2029-2041.

      Azcon-Bieto J. (2008) Fundamentos de fisiolog铆a vegetal. (MCGRAW-HILL / INTERAMERICANA DE ESPA脩A, S.A ed.).

      Barroso J.B., Corpas F.J., Carreras A., Rodriguez-Serrano M., Esteban F.J., Fernandez-Ocana A., Chaki M., Romero-Puertas M.C., Valderrama R., Sandalio L.M. & del Rio L.A. (2006) Localization of S-nitrosoglutathione and expression of S-nitrosoglutathione reductase in pea plants under cadmium stress. Journal of Experimental Botany, 57, 1785-1793.

      Barzana G., Aroca R., Bienert G.P., Chaumont F. & Ruiz-Lozano J.M. (2014) New Insights into the regulation of aquaporins by the arbuscular mycorrhizal symbiosis in maize plants under drought stress and possible implications for plant performance. Molecular Plant-Microbe Interactions, 27, 349-363.

      Barzana G., Aroca R., Paz J.A., Chaumont F., Martinez-Ballesta M.C., Carvajal M. & Ruiz-Lozano J.M. (2012) Arbuscular mycorrhizal symbiosis increases relative apoplastic water flow in roots of the host plant under both well-watered and drought stress conditions. Annals of Botany, 109, 1009-1017.

      Beaudette P.C., Chlup M., Yee J. & Emery R.J.N. (2007) Relationships of root conductivity and aquaporin gene expression in Pisum sativum: diurnal patterns and the response to HgCl2 and ABA. Journal of Experimental Botany, 58, 1291-1300.

      Boursiac Y., Boudet J., Postaire O., Luu D.T., Tournaire-Roux C. & Maurel C. (2008) Stimulus-induced downregulation of root water transport involves reactive oxygen species-activated cell signalling and plasma membrane intrinsic protein internalization. Plant Journal, 56, 207-218.

      Breda N., Granier A., Aussenac G. & Aussenac G. (1995) Effects of thinning on soil and tree water relations, transpiration and growth in an oak forest (Quercus petraea (Matt.) Liebl.). Tree Physiology, 15, 295-306.

      Cecconi D., Orzetti S., Vandelle E., Rinalducci S., Zolla L. & Delledonne M. (2009) Protein nitration during defense response in Arabidopsis thaliana. Electrophoresis, 30, 2460-2468.

      Corpas F.J., Barroso J.B., Carreras A., Quiros M., Leon A.M., Romero-Puertas M.C., Esteban F.J., Valderrama R., Palma J.M., Sandalio L.M., Gomez M. & del Rio L.A. (2004) Cellular and subcellular localization of endogenous nitric oxide in young and senescent pea plants. Plant Physiology, 136, 2722-2733.

      Corpas F.J., Leterrier M., Valderrama R., Airaki M., Chaki M., Palma J.M. & Barroso J.B. (2011) Nitric oxide imbalance provokes a nitrosative response in plants under abiotic stress. Plant Science, 181, 604-611.

      Creelman R.A. & Mullet J.E. (1995) Jasmonic acid distribution and action in plants - Regulation during development and response to biotic and abiotic stress. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 92, 4114-4119.

      de Ollas C., Hernando B., Arbona V. & Gomez-Cadenas A. (2013) Jasmonic acid transient accumulation is needed for abscisic acid increase in citrus roots under drought stress conditions. Physiologia Plantarum, 147, 296-306.

      Donovan M.P., Nabity P.D. & DeLucia E.H. (2013) Salicylic acid-mediated reductions in yield in Nicotiana attenuata challenged by aphid herbivory. Arthropod-Plant Interactions, 7, 45-52.

      Duursma R.A., Kolari P., Peramaki M., Nikinmaa E., Hari P., Delzon S., Loustau D., Ilvesniemi H., Pumpanen J. & Makela A. (2008) Predicting the decline in daily maximum transpiration rate of two pine stands during drought based on constant minimum leaf water potential and plant hydraulic conductance. Tree Physiology, 28, 265-276.

      Ebel R.C., Duan X., Still D.W. & Auge R.M. (1997) Xylem sap abscisic acid concentration and stomatal conductance of mycorrhizal Vigna unguiculata in drying soil. New Phytologist, 135, 755-761.

      El-Mesbahi M.N., Azcon R., Ruiz-Lozano J.M. & Aroca R. (2012) Plant potassium content modifies the effects of arbuscular mycorrhizal symbiosis on root hydraulic properties in maize plants. Mycorrhiza, 22, 555-564.

      Faber B.A., Zasoski R.J., Munns D.N. & Shackel K. (1991) A method for measuring hyphal nutrient and water-uptake in mycorrhizal plants. Canadian Journal of Botany-Revue Canadienne De Botanique, 69, 87-94.

      Farooq M., Basra S.M.A., Wahid A., Ahmad N. & Saleem B.A. (2009) Improving the drought tolerance in rice (Oryza sativa L.) by exogenous application of salicylic acid. Journal of Agronomy and Crop Science, 195, 237-246.

      Fetter K., Van Wilder V., Moshelion M. & Chaumont F. (2004) Interactions between plasma membrane aquaporins modulate their water channel activity. Plant Cell, 16, 215-228.

      Forchetti G., Masciarelli O., Izaguirre M.J., Alemano S., Alvarez D. & Abdala G. (2010) Endophytic bacteria improve seedling growth of sunflower under water stress, produce salicylic acid, and inhibit growth of pathogenic fungi. Current Microbiology 61, 485-493.

      Galetskiy D., Lohscheider J.N., Kononikhin A.S., Popov I.A., Nikolaev E.N. & Adamska I. (2011) Phosphorylation and nitration levels of photosynthetic proteins are conversely regulated by light stress. Plant Molecular Biology, 77, 461-473.

      Gao Z., He X., Zhao B., Zhou C., Liang Y., Ge R., Shen Y. & Huang Z. (2010) Overexpressing a putative aquaporin gene from wheat, TaNIP, enhances salt tolerance in transgenic Arabidopsis. Plant and Cell Physiology, 51, 767-775.

      Garcia-Andrade J., Ramirez V., Flors V. & Vera P. (2011) Arabidopsis ocp3 mutant reveals a mechanism linking ABA and JA to pathogen-induced callose deposition. Plant Journal, 67, 783-794.

      Gerbeau P., Amodeo G., Henzler T., Santoni V., Ripoche P. & Maurel C. (2002) The water permeability of Arabidopsis plasma membrane is regulated by divalent cations and pH. Plant Journal, 30, 71-81.

      Glazebrook J. (2005) Contrasting mechanisms of defense against biotrophic and necrotrophic pathogens. Annual Review of Phytopathology, 43, 205-227.

      Hause B., Maier W., Miersch O., Kramell R. & Strack D. (2002) Induction of jasmonate biosynthesis in arbuscular mycorrhizal barley roots. Plant Physiology, 130, 1213-1220.

      Herrera-Medina M.J., Tamayo M.I., Vierheilig H., Ocampo-Bole J.A. & Garcia-Garrido J.M. (2008) The jasmonic acid signalling pathway restricts the development of the arbuscular mycorrhizal association in tomato. Journal Plant Growth Regulation, 27, 221-230.

      Ho I. & Trappe J.M. (1975) Nitrate reducing capacity of 2 vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi. Mycologia, 67, 886-888.

      Hossain M.A., Munemasa S., Uraji M., Nakamura Y., Mori I.C. & Murata Y. (2011) Involvement of endogenous abscisic acid in methyl jasmonate-induced stomatal closure in Arabidopsis. Plant Physiology, 156, 430-438.

      Howe G.A., Lightner J., Browse J. & Ryan C.A. (1996) An octadecanoid pathway mutant (JL5) of tomato is compromised in signaling for defense against insect attack. Plant Cell, 8, 2067-2077.

      Islam M.A., MacDonald S.E. & Zwiazek J.J. (2003) Responses of black spruce (Picea mariana) and tamarack (Larix laricina) to flooding and ethylene. Tree Physiology, 23, 545-552.

      Islam M.M., Munemasa S., Hossain M.A., Nakamura Y., Mori I.C. & Murata Y. (2010) Roles of AtTPC1, vacuolar two pore channel 1, in Arabidopsis stomatal closure. Plant and Cell Physiology, 51, 302-311.

      Ismail A., Riemann M. & Nick P. (2012) The jasmonate pathway mediates salt tolerance in grapevines. Journal of Experimental Botany, 63, 2127-2139.

      Jahromi F., Aroca R., Porcel R. & Ruiz-Lozano J.M. (2008) Influence of salinity on the In vitro development of Glomus intraradices and on the In vivo physiological and molecular responses of mycorrhizal lettuce plants. Microbial Ecology, 55, 45-53.

      Javot H., Lauvergeat V., Santoni V., Martin-Laurent F., Guclu J., Vinh J., Heyes J., Franck K.I., Schaffner A.R., Bouchez D. & Maurel C. (2003) Role of a single aquaporin isoform in root water uptake. Plant Cell, 15, 509-522.

      Javot H. & Maurel C. (2002) The role of aquaporins in root water uptake. Annals of Botany, 90, 301-313.

      Johansson I., Karlsson M., Shukla V.K., Chrispeels M.J., Larsson C. & Kjellbom P. (1998) Water transport activity of the plasma membrane aquaporin PM28A is regulated by phosphorylation. Plant Cell, 10, 451-459.

      Johansson I., Larsson C., Ek B. & Kjellbom P. (1996) The major integral proteins of spinach leaf plasma membranes are putative aquaporins and are phosphorylated in response to Ca2+ and apoplastic water potential. Plant Cell, 8, 1181-1191.

      Kang G.Z., Li G.Z., Liu G.Q., Xu W., Peng X.Q., Wang C.Y., Zhu Y.J. & Guo T.C. (2013) Exogenous salicylic acid enhances wheat drought tolerance by influence on the expression of genes related to ascorbate-glutathione cycle. Biologia Plantarum, 57, 718-724.

      Krishnamurthy P., Ranathunge K., Nayak S., Schreiber L. & Mathew M.K. (2011) Root apoplastic barriers block Na+ transport to shoots in rice (Oryza sativa L.). Journal of Experimental Botany, 62, 4215-4228.

      Kudoyarova G., Veselova S., Hartung W., Farhutdinov R., Veselov D. & Sharipova G. (2011) Involvement of root ABA and hydraulic conductivity in the control of water relations in wheat plants exposed to increased evaporative demand. Planta, 233, 87-94.

      Lamattina L., Garcia-Mata C., Graziano M. & Pagnussat G. (2003) Nitric oxide: The versatility of an extensive signal molecule. Annual Review of Plant Biology, 54, 109-136.

      Lamotte O., Courtois C., Gravot A., Vandelle E., Gauthier A., Dobrowolska G., Pugin A. & Wendehenne D. (2005) Nitric oxide produced in plant cells challenged by elicitors and abiotic stressors acts as a calcium-mobilizing second messenger. Comparative Biochemistry and Physiology a-Molecular & Integrative Physiology, 141, S241-S242.

      Lee J., Parthier B. & Lobler M. (1996) Jasmonate signalling can be uncoupled from abscisic acid signalling in barley: Identification of jasmonate-regulated transcripts which are not induced by abscisic acid. Planta, 199, 625-632.

      Lee S.H., Ahn S.J., Im Y.J., Cho K., Chung G.C., Cho B.H. & Han O. (2005) Differential impact of low temperature on fatty acid unsaturation and lipoxygenase activity in figleaf gourd and cucumber roots. Biochemical and Biophysical Research Communications, 330, 1194-1198.

      Li T., Hu Y.J., Hao Z.P., Li H., Wang Y.S. & Chen B.D. (2013) First cloning and characterization of two functional aquaporin genes from an arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices. New Phytologist, 197, 617-630.

      Liu H.Y., Yu X., Cui D.Y., Sun M.H., Sun W.N., Tang Z.C., Kwak S.S. & Su W.A. (2007) The role of water channel proteins and nitric oxide signaling in rice seed germination. Cell Research, 17, 638-649.

      Lozano-Juste J., Colom-Moreno R. & Leon J. (2011) In vivo protein tyrosine nitration in Arabidopsis thaliana. Journal of Experimental Botany, 62, 3501-3517.

      Maurel C., Verdoucq L., Luu D.T. & Santoni V. (2008) Plant aquaporins: Membrane channels with multiple integrated functions. Annual Review of Plant Biology, 59, 595-624.

      Munemasa S., Mori I.C. & Murata Y. (2011) Methyl jasmonate signaling and signal crosstalk between methyl jasmonate and abscisic acid in guard cells. Plant Signaling and Behavior, 6, 939-941.

      O'Donnell P.J., Schmelz E., Block A., Miersch O., Wasternack C., Jones J.B. & Klee H.J. (2003) Multiple hormones act sequentially to mediate a susceptible tomato pathogen defense response. Plant Physiology, 133, 1181-1189.

      Palma J.M., Longa M.A., Delrio L.A. & Arines J. (1993) Superoxide-dismutase in vesicular arbuscular -mycorrhizal red-clover plants. Physiologia Plantarum, 87, 77-83.

      Peret B., Li G., Zhao J., Band L.R., Voss U., Postaire O., Doan-Trung L., Da Ines O., Casimiro I., Lucas M., Wells D.M., Lazzerini L., Nacry P., King J.R., Jensen O.E., Schaeffner A.R., Maurel C. & Bennett M.J. (2012) Auxin regulates aquaporin function to facilitate lateral root emergence. Nature Cell Biology, 14, 991-1006.

      Perrone I., Gambino G., Chitarra W., Vitali M., Pagliarani C., Riccomagno N., Balestrini R., Kaldenhoff R., Uehlein N., Gribaudo I., Schubert A. & Lovisolo C. (2012) The grapevine root-specific aquaporin VvPIP2;4N controls root hydraulic conductance and leaf gas exchange under well-watered conditions but not under water stress. Plant Physiology, 160, 965-977.

      Pfeffer P.E., Douds D.D., Bucking H., Schwartz D.P. & Shachar-Hill Y. (2004) The fungus does not transfer carbon to or between roots in an arbuscular mycorrhizal symbiosis. New Phytologist, 163, 617-627.

      Porcel R., Aroca R., Azcon R. & Ruiz-Lozano J.M. (2006) PIP aquaporin gene expression in arbuscular mycorrhizal Glycine max and Lactuca sativa plants in relation to drought stress tolerance. Plant Molecular Biology, 60, 389-404.

      Porcel R., Barea J.M. & Ruiz-Lozano J.M. (2003) Antioxidant activities in mycorrhizal soybean plants under drought stress and their possible relationship to the process of nodule senescence. New Phytologist, 157, 135-143.

      Postaire O., Tournaire-Roux C., Grondin A., Boursiac Y., Morillon R., Schaeffner A.R. & Maurel C. (2010) A PIP1 aquaporin contributes to hydrostatic pressure-induced water transport in both the root and rosette of Arabidopsis. Plant Physiology, 152, 1418-1430.

      Poutrain P., Mazars C., Thiersault M., Rideau M. & Pichon O. (2009) Two distinct intracellular Ca2+-release components act in opposite ways in the regulation of the auxin-dependent MIA biosynthesis in Catharanthus roseus cells. Journal of Experimental Botany, 60, 1387-1398.

      Prak S., Hem S., Boudet J., Viennois G., Sommerer N., Rossignol M., Maurel C. & Santoni V. (2008) Multiple phosphorylations in the C-terminal tail of plant plasma membrane aquaporins. Molecular & Cellular Proteomics, 7, 1019-1030.

      Proietti S., Bertini L., Timperio A.M., Zolla L., Caporale C. & Caruso C. (2013) Crosstalk between salicylic acid and jasmonate in Arabidopsis investigated by an integrated proteomic and transcriptomic approach. Molecular BioSystems, 9, 1169-1187.

      Ranathunge K., Lin J.X., Steudle E. & Schreiber L. (2011) Stagnant deoxygenated growth enhances root suberization and lignifications, but differentially affects water and NaCl permeabilities in rice (Oryza sativa L.) roots. Plant Cell and Environment, 34, 1223-1240.

      Ruiz-Lozano J.M., Alguacil M.M., Barzana G., Vernieri P. & Aroca R. (2009) Exogenous ABA accentuates the differences in root hydraulic properties between mycorrhizal and non mycorrhizal maize plants through regulation of PIP aquaporins. Plant Molecular Biology, 70, 565-579.

      Ruiz-Lozano J.M., Azcon R. & Palma J.M. (1996) Superoxide dismutase activity in arbuscular mycorrhizal Lactuca sativa plants subjected to drought stress. New Phytologist, 134, 327-333.

      Ruiz-Lozano J.M., Gomez M. & Azcon R. (1995) Influence of different Glomus species on the time-course of physiological plant-responses of lettuce to progressive drought stress periods. Plant Science, 110, 37-44.

      Schreiber L., Franke R. & Hartmann K. (2005) Effects of NO3 deficiency and NaCl stress on suberin deposition in rhizo- and hypodermal (RHCW) and endodermal cell walls (ECW) of castor bean (Ricinus communis L.) roots. Plant and Soil, 269, 333-339.

      Siemens J.A. & Zwiazek J.J. (2003) Effects of water deficit stress and recovery on the root water relations of trembling aspen (Populus tremuloides) seedlings. Plant Science, 165, 113-120.

      Siemens J.A. & Zwiazek J.J. (2004) Changes in root water flow properties of solution culture-grown trembling aspen. Physiologia Plantarum, 121, 44-49.

      Smith S.E., Jakobsen I., Gronlund M. & Smith F.A. (2011) Roles of arbuscular mycorrhizas in plant phosphorus nutrition: Interactions between pathways of phosphorus uptake in arbuscular mycorrhizal roots have important implications for understanding and manipulating plant phosphorus acquisition. Plant Physiology, 156, 1050-1057.

      Smith S.E. & Read D.J. (2008) Mycorrhizal symbiosis. Academic Press, London.

      Sohrabi Y., Heidari G., Weisany W., Golezani K.G. & Mohammadi K. (2012) Changes of antioxidative enzymes, lipid peroxidation and chlorophyll content in chickpea types colonized by different Glomus species under drought stress. Symbiosis, 56, 5-18.

      Sorieul M., Santoni V., Maurel C. & Luu D.T. (2011) Mechanisms and effects of retention of over-expressed aquaporin AtPIP2;1 in the endoplasmic reticulum. Traffic, 12, 473-482.

      Steudle E. (2000) Water uptake by plant roots: an integration of views. Plant and Soil, 226, 45-56.

      Steudle E. & Peterson C.A. (1998) How does water get through roots?. Journal of Experimental Botany, 49, 775-788.

      Sun Q.P., Yu Y.K., Wan S.X., Zhao F.K. & Hao Y.L. (2009) Is there crosstalk between extracellular and intracellular calcium mobilization in jasmonic acid signaling. Plant Growth Regulation, 57, 7-13.

      Sutka M., Li G., Boudet J., Boursiac Y., Doumas P. & Maurel C. (2011) Natural variation of root hydraulics in Arabidopsis grown in normal and salt-stressed conditions. Plant Physiology, 155, 1264-1276.

      Taylor I.B., Linforth R.S.T., Alnaieb R.J., Bowman W.R. & Marples B.A. (1988) The wilty tomato mutants flacca and sitiens are impaired in the oxidation of ABA-aldehyde to ABA. Plant Cell and Environment, 11, 739-745.

      Trifilo P., Raimondo F., Nardini A., Lo Gullo M.A. & Salleo S. (2004) Drought resistance of Ailanthus altissima: root hydraulics and water relations. Tree Physiology, 24, 107-114.

      Vandeleur R.K., Mayo G., Shelden M.C., Gilliham M., Kaiser B.N. & Tyerman S.D. (2009) The role of plasma membrane intrinsic protein aquaporins in water transport through roots: Diurnal and drought stress responses reveal different strategies between isohydric and anisohydric cultivars of grapevine. Plant Physiology, 149, 445-460.

      White P.J. (2000) Calcium channels in higher plants. Biochimica et Biophysica Acta, 1465, 171-189.

      Zelazny E., Borst J.W., Muylaert M., Batoko H., Hemminga M.A. & Chaumont F. (2007) FRET imaging in living maize cells reveals that plasma membrane aquaporins interact to regulate their subcellular localization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 104, 12359-12364.

      Zheng C., Jiang D., Liu F., Dai T., Liu W., Jing Q. & Cao W. (2009) Exogenous nitric oxide improves seed germination in wheat against mitochondrial oxidative damage induced by high salinity. Environmental and Experimental Botany, 67, 222-227.

      Zimmermann H.M. & Steudle E. (1998) Apoplastic transport across young maize roots: effect of the exodermis. Planta, 206, 7-19.


Fundaci贸n Dialnet

Dialnet Plus

  • M谩s informaci贸n sobre Dialnet Plus

Opciones de compartir

Opciones de entorno