1. Introducción o motivación de la tesis La septicemia hemorrágica (SH) es una enfermedad infecciosa hiperaguda grave causada por Pasteurella multocida tipo B y E. Esta pasteurellosis sistémica afecta principalmente a ganado bovino y búfalos en países asiáticos y africanos, donde es endémica y causa cuantiosas pérdidas económicas. Sin embargo, en otros países y especies la SH es poco común y, por tanto, menos conocida. Varios países europeos, incluido España, han registrado brotes esporádicos de SH en ganado bovino, porcino y ungulados silvestres durante la última década. Si bien existen vacunas para controlar la SH, dada la heterogeneidad del agente causal, es necesaria la tipificación molecular de los diferentes aislados, así como el conocimiento de su perfil de resistencia antimicrobiana para establecer el control de la enfermedad.
Los principales objetivos de este estudio fueron la descripción de los brotes de SH acontecidos en ganado porcino y del primero en bovino en España, la caracterización bioquímica, molecular de las cepas involucradas en dichos brotes y la determinación de su perfil de susceptibilidad antimicrobiana.
2. Contenido de la investigación En este estudio, diferentes muestras post-mortem procedentes de 53 brotes en ganado porcino y del primer brote en ganado bovino, acontecidos entre 2009 y 2019, fueron analizadas. El signo clínico predominante los animales afectados de ambas especies fue un marcado edema en la región submandibular y ventral del cuello. En los hallazgos post-mortem destacó la presencia de múltiples hemorragias localizadas en todos los órganos. La identificación bioquímica y molecular de P. multocida tipo B, biovar 3, determinó la SH como la enfermedad causante de todos los brotes.
El estudio molecular de los aislados causantes de los brotes se realizó mediante nueve PCRs simples y múltiples. Se analizaron 14 genes relacionados con la virulencia de P. multocida (ompH, oma87, psl, pfhA, ptfA, nanH, nanB, sodA, sodC, hgbA, hgbB, tbpA, exbBD-tonB and toxA). La elevada prevalencia de los genes ompH, psl, nanH, nanB, sodC y hgbA en diferentes hospedadores y tipos capsulares de P. multocida podría indicar que dichos genes tienen mayor relevancia en la patogénesis de dicho microorganismo. El gen pfhA, anteriormente relacionado con la SH en rumiantes, se detectó además en el cien por cien de los aislados porcinos en este estudio.
El estudio del perfil de sensibilidad antimicrobiana se realizó mediante la determinación de la concentración mínima inhibitoria (CMI) de diez antimicrobianos. Los aislados procedentes de ganado bovino mostraron elevados porcentajes de susceptibilidad a todos los antibióticos testados a excepción de la lincomicina, completamente inefectiva frente a los aislados de ambas especies. Los aislados procedentes de porcino presentaron mayores porcentajes de resistencia (entre el 15 y el 30%) que los procedentes de bovino a la mayoría de antibióticos testados. Únicamente la enrofloxacina y el ceftiofur mostraron escasos porcentajes de resistencia en los aislados de porcino. Las diferencias en cuanto a resistencias antibióticas del mismo patógeno en los distintos hospedadores podrían deberse al mayor uso de antibióticos en la industria porcina en España.
3. Conclusión La presencia de brotes periódicos durante la última década en ganado criado en extensivo indica la posibilidad de que la SH sea endémica en ciertas áreas de España, donde puede estar subestimada. El conocimiento del curso y características de los brotes de SH podría evitar la confusión con otras enfermedades, facilitando el diagnóstico de esta enfermedad en la que el tratamiento temprano es fundamental. El patrón de presentación en el ganado porcino es: animales criados en extensivo, entre los 4 y los 8 meses de edad con una presentación sobreaguda-aguda del proceso.
El biovar 3 fue el único identificado entre los aislados de Pasteurella multocida tipo B caracterizados en este estudio, aunque trabajos previos describieron la presencia del biovar 13 en un brote de Septicemia Hemorrágica en España. Dado que ambos biovares sólo se diferencian fenotípicamente en base a la prueba de la ornitina descarboxilasa (positivo para el biovar 3 y negativo para el 13), recomendamos la utilización de técnicas moleculares que confirmen la presencia o ausencia del gen que codifica esta enzima, para una correcta caracterización del biovar de P. multocida.
El gen pfhA parece estar relacionado con el tipo capsular B de P. multocida independientemente del hospedador o de su condición clínica, por lo que podría ser un elemento clave para el control futuro de dicho patógeno. El tratamiento más eficaz de la SH podría obtenerse con ceftiofur, enrofloxacina o gentamicina. Sin embargo, dichos antibióticos representan un grupo de importancia crítica para medicina humana de manera que quedarían restringidos a un uso de emergencia en las primeras fases de la enfermedad. Una vez conocido el perfil de susceptibilidad se priorizarían antibióticos como el cloranfenicol, la penicilina o las tetraciclinas para garantizar un tratamiento efectivo de la SH minimizando el desarrollo de resistencias bacterianas.
4. Bibliografía Alós, J. I. 2015. Antibiotic Resistance: A global crisis. Enfermedades Infecciosas y Microbiologia Clínica 33(10):639-702. doi: DOI: 10.1016/j.eimc.2014.10.004 Annas, S., M. Zamri-Saad, F. F. Jesse, and Z. Zunita. 2014. New sites of localisation of Pasteurella multocida B:2 in buffalo surviving experimental haemorrhagic septicaemia. BMC Vet Res 10:88. doi: 10.1186/1746-6148-10-88 Benkirane, A., and M. C. L. De Alwis. 2002. Haemorrhagic septicaemia, its significance, prevention and control in Asia. Vet. Med. 47:234-240.
Bethe, A., L. H. Wieler, H. J. Selbitz, and C. Ewers. 2009. Genetic diversity of porcine Pasteurella multocida strains from the respiratory tract of healthy and diseased swine. Veterinary Microbiology 139(1-2):97-105. doi: 10.1016/j.vetmic.2009.04.027 Blackall, P. J., and J. K. Miflin. 2000. Identification and typing of Pasteurella multocida: a review. Avian Pathol 29(4):271-287. doi: 10.1080/03079450050118395 Blackall, P. J., J. L. Pahoff, and R. Bowles. 1997. Phenotypic characterisation of Pasteurella multocida isolates from Australian pigs. Veterinary Microbiology 57(4):355-360. (Article) doi: 10.1016/s0378-1135(97)00111-9 Borge, C., I. Barranco, J. M. Márquez del Cid, M. A. Rodríguez-Guerra, A. Carbonero, L. Carrasco, and A. Perea. 2011. Outbreak of acute septicaemia by Pasteurella multocida type B in pigs reared in extensive system in Spain. In: 3rd European Simposium of Porcine Health and Management (ESPHM). Espoo, Finland. p 127.
Bosch, M., E. Garrido, M. Llagostera, A. M. P. de Rozas, I. Badiola, and J. Barbe. 2002a. Pasteurella multocida exbB, exbD and tonB genes are physically linked but independently transcribed. Fems Microbiology Letters 210(2):201-208. (Article) doi: 10.1111/j.1574-6968.2002.tb11181.x Bosch, M., M. E. Garrido, M. Llagostera, A. M. P. de Rozas, I. Badiola, and J. Barbe. 2002b. Characterization of the Pasteurella multocida hgbA gene encoding a hemoglobin-binding protein. Infection and Immunity 70(11):5955-5964. (Article) doi: 10.1128/iai.70.11.5955-5964.2002 Boyce, J. D., and B. Adler. 2000. The capsule is a virulence determinant in the pathogenesis of Pasteurella multocida M1404 (B : 2). Infection and Immunity 68(6):3463-3468. (Article) doi: 10.1128/iai.68.6.3463-3468.2000 Boyce, J. D., T. Seemann, B. Adler, and M. Harper. 2012. Pathogenomics of Pasteurella multocida. Curr Top Microbiol Immunol 361:23-38. doi: 10.1007/82_2012_203 Brickell, S. K., L. M. Thomas, K. A. Long, M. Panaccio, and P. R. Widders. 1998. Development of a PCR test based on a gene region associated with the pathogenicity of Pasteurella multocida serotype B:2, the causal agent of haemorrhagic septicaemia in Asia. Vet Microbiol 59(4):295-307.
Cardoso-Toset, F., J. Gomez-Laguna, M. Callejo, A. I. Vela, L. Carrasco, J. F. Fernandez-Garayzabal, A. Maldonado, and I. Luque. 2013. Septicaemic pasteurellosis in free-range pigs associated with an unusual biovar 13 of Pasteurella multocidas. Veterinary Microbiology 167(3-4):690-694. doi: 10.1016/j.vetmic.2013.08.005 CFSPH. 2009. Septicemia Hemorrágica.http://www.cfsph.iastate.edu/Factsheets/es/hemorrhagic_septicemia-es.pdf.
Christensen, H., and M. Bisgaard. 2010. Molecular classification and its impact on diagnostics and understanding the phylogeny and epidemiology of selected members of Pasteurellaceae of veterinary importance. Berl Munch Tierarztl Wochenschr 123(1-2):20-30.
Christensen, J. P., and M. Bisgaard. 1997. Avian pasteurellosis: Taxonomy of the organisms involved and aspects of pathogenesis. Avian Pathol 26(3):461-483. doi: 10.1080/03079459708419228 Christensen, J. P., and M. Bisgaard. 2000. Fowl cholera. Rev Sci Tech 19(2):626-637.
Cox, A. J., M. L. Hunt, J. D. Boyce, and B. Adler. 2003. Functional characterization of HgbB, a new hemoglobin binding protein of Pasteurella multocida. Microbial Pathogenesis 34(6):287-296. doi: 10.1016/s0882-4010(03)00062-7 Cuevas, I., I. Pacheco, J. C. Marín, A. Carbonero, D. Cano, I. García-Bocanegra, and C. Borge. 2016. Brote de septicemia hemorrágica por Pasteurella multocida B:3 en una explotación de bovino extensivo. In: XII Congreso Internacional Anembe de Medicina Bovina., Santiago de Compostela, Spain.
Dabo, S. M., J. D. Taylor, and A. W. Confer. 2007. Pasteurella multocida and bovine respiratory disease. Anim Health Res Rev 8(2):129-150. doi: 10.1017/s1466252307001399 Davies, R. L., R. MacCorquodale, S. Baillie, and B. Caffrey. 2003. Characterization and comparison of Pasteurella multocida strains associated with porcine pneumonia and atrophic rhinitis. Journal of Medical Microbiology 52(1):59-67. doi: 10.1099/jmm.0.05019-0 De Alwis, M. C. 1992. Haemorrhagic septicaemia--a general review. Br Vet J 148(2):99-112. doi: 10.1016/0007-1935(92)90101-6 de Alwis, M. C., T. G. Wijewardana, A. I. Gomis, and A. A. Vipulasiri. 1990. Persistence of the carrier status in haemorrhagic septicaemia (Pasteurella multocida serotype 6:B infection) in buffaloes. Trop Anim Health Prod 22(3):185-194.
De Alwis, M. C. L. 1999. Haemorrhagic Septicaemia No. 57, ACIAR Monograph.
Dziva, F., A. P. Muhairwa, M. Bisgaard, and H. Christensen. 2008. Diagnostic and typing options for investigating diseases associated with Pasteurella multocida. Vet Microbiol 128(1-2):1-22. doi: 10.1016/j.vetmic.2007.10.018 El Garch, F., A. de Jong, S. Simjee, H. Moyaert, U. Klein, C. Ludwig, H. Marion, S. Haag-Diergarten, A. Richard-Mazet, V. Thomas, and E. Siegwart. 2016. Monitoring of antimicrobial susceptibility of respiratory tract pathogens isolated from diseased cattle and pigs across Europe, 2009-2012: VetPath results. Vet Microbiol 194:11-22. doi: 10.1016/j.vetmic.2016.04.009 Ewers, C., A. Lubke-Becker, A. Bethe, S. Kiessling, M. Filter, and L. H. Wieler. 2006. Virulence genotype of Pasteurella multocida strains isolated from different hosts with various disease status. Veterinary Microbiology 114(3-4):304-317. doi: 10.1016/j.vetmic.2005.12.012 FAO. 2016. The FAO Action Plan on Antimicrobial Resistance 2016-2020. http://www.fao.org/3/a-i5996e.pdf.
FAO. 2017. Antimicrobial resistance in food and agriculture. http://www.fao.org/3/a-i7138e.pdf.
Fegan, N., P. J. Blackall, and J. L. Pahoff. 1995. Phenotypic characterisation of Pasteurella multocida isolates from Australian poultry. Veterinary Microbiology 47(3-4):281-286. (Article) doi: 10.1016/0378-1135(95)00119-0 Franson, J. C., and B. L. Smith. 1988. Septicemic pasteurellosis in elk (Cervus elaphus) on the United States National Elk Refuge, Wyoming. J Wildl Dis 24(4):715-717. doi: 10.7589/0090-3558-24.4.715 Fuller, T. E., M. J. Kennedy, and D. E. Lowery. 2000. Identification of Pasteurella multocida virulence genes in a septicemic mouse model using signature-tagged mutagenesis. Microbial Pathogenesis 29(1):25-38. (Article) doi: 10.1006/mpat.2000.0365 Gamage, L. N. A., T. G. Wijewardana, H. L. G. Bastiansz, and A. A. Vipulasiri. 1995. An outbreak of acute pasteurellosis in swine caused by serotype B:2 in Sri Lanka. . Sri Lanka Veterinary Journal 42:15-19.
García, N. 2010. Caracterización fenotípica y genética de aislados de Pasteurella multocida obtenidos de ganado porcino., Universidad Complutense de Madrid.
García, N. 2010. Caracterización fenotípica y genética de aislados de Pasteurella multocida obtenidos de ganado porcino., Universidad Complutense de Madrid.
Govindaraj, G., P. Krishnamoorthy, K. R. Nethrayini, R. Shalini, and H. Rahman. 2017. Epidemiological features and financial loss due to clinically diagnosed Haemorrhagic Septicemia in bovines in Karnataka, India. Prev Vet Med 144:123-133. doi: 10.1016/j.prevetmed.2017.05.027 Harper, M., J. D. Boyce, and B. Adler. 2006. Pasteurella multocida pathogenesis: 125 years after Pasteur. FEMS Microbiol Lett 265(1):1-10. doi: 10.1111/j.1574-6968.2006.00442.x Heddleston, K. L., J. E. Gallagher, and P. A. Rebers. 1972. Fowl cholera: gel diffusion precipitin test for serotyping Pasteruella multocida from avian species. Avian Dis 16(4):925-936.
Kumar, A. A., S. B. Shivachandra, A. Biswas, V. P. Singh, and S. K. Srivastava. 2004. Prevalent serotypes of Pasteurella multocida isolated from different animal and avian species in India. Vet Res Commun 28(8):657-667.
Kumar, P., V. P. Singh, R. K. Agrawal, and S. Singh. 2009. Identification of Pasteurella multocida isolates of ruminant origin using polymerase chain reaction and their antibiogram study. Trop Anim Health Prod 41(4):573-578. doi: 10.1007/s11250-008-9226-2 Lin, J., S. X. Huang, and Q. J. Zhang. 2002. Outer membrane proteins: key players for bacterial adaptation in host niches. Microbes and Infection 4(3):325-331. doi: 10.1016/s1286-4579(02)01545-9 Lizarazo, Y. A., E. F. Ferri, A. J. de la Fuente, and C. B. Martín. 2006. Evaluation of changes in antimicrobial susceptibility patterns of Pasteurella multocida subsp multocida isolates from pigs in Spain in 1987-1988 and 2003-2004. Am J Vet Res 67(4):663-668. doi: 10.2460/ajvr.67.4.663 Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación. Tomado de https://www.mapa.gob.es/es/ganaderia/temas/produccion-y-mercados-ganaderos/sectores-ganaderos/ (Accessed Feb. 2020).
Magyar, T., and A. J. Lax. 2002. Atrophic Rhinitis. (Text) doi: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK2478/ Magyar, T., B. Ujvári, L. Szeredi, N. Virsinger, E. Albert, Z. Német, E. Csuka, and I. Biksi. 2017. Re-emergence of bovine haemorrhagic septicaemia in Hungary. Acta Vet Hung 65(1):41-49. doi: 10.1556/004.2017.004 May, B. J., Q. Zhang, L. L. Li, M. L. Paustian, T. S. Whittam, and V. Kapur. 2001. Complete genomic sequence of Pasteurella multocida, Pm70. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 98(6):3460-3465. doi: 10.1073/pnas.051634598 Mizan, S., A. Henk, A. Stallings, M. Maier, and M. D. Lee. 2000. Cloning and characterization of sialidases with 2-6 ' and 2-3 ' sialyl lactose specificity from Pasteurella multocida. Journal of Bacteriology 182(24):6874-6883. (Article) doi: 10.1128/jb.182.24.6874-6883.2000 Muangthai, K., P. Tankaew, T. Varinrak, R. Uthi, S. Rojanasthien, T. Sawada, and N. Sthitmatee. 2018. Intranasal immunization with a recombinant outer membrane protein H based Haemorrhagic septicemia vaccine in dairy calves. J Vet Med Sci 80(1):68-76. doi: 10.1292/jvms.17-0176 Mutters, R., P. Ihm, S. Pohl, W. Frederiksen, and W. Mannheim. 1985. Reclassification of the genus Pasteurella Trevisan 1887 on the basis of deoxyribonucleic acid homology, with proposals for the new species Pasteurella dagmatis, Pasteurella canis, Pasteurella stomatis, Pasteurella anatis and Pasteurella langaa. International Journal of Systematic Bacteriology 35:309-322.
Myint, A., and G. R. Carter. 1989. Prevention of haemorrhagic septicaemia in buffaloes and cattle with a live vaccine. Vet Rec 124(19):508-509.
Ogunnariwo, J. A., and A. B. Schryvers. 2001. Characterization of a novel transferrin receptor in bovine strains of Pasteurella multocida. Journal of Bacteriology 183(3):890-896. (Article) doi: 10.1128/jb.183.3.890-896.2001 Oh, Y. H., D. C. Moon, Y. J. Lee, B. H. Hyun, and S. K. Lim. 2018. Antimicrobial resistance of. Vet Rec Open 5(1):e000293. doi: 10.1136/vetreco-2018-000293 OIE. 2013. Haemorrhagic Septicaemia. http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Animal_Health_in_the_World/docs/pdf/Disease_cards/HAEMORRHAGIC_SEPTICEMIA.pdf (Accessed Feb. 2019).
Pasteur. 1880. Sur les maladies virulents et en particulier sur la maladie appelee vulgairement cholera del poules.
Pedersen, K. B., and F. Elling. 1984. The pathogenesis of atrophic rhinitis in pigs induced by toxigenic Pasteurella multocida. J Comp Pathol 94(2):203-214.
Petersen, A., M. Bisgaard, K. Townsend, and H. Christensen. 2014. MLST typing of Pasteurella multocida associated with haemorrhagic septicaemia and development of a real-time PCR specific for haemorrhagic septicaemia associated isolates. Veterinary Microbiology 170(3-4):335-341. doi: 10.1016/j.vetmic.2014.02.022 Petersen, S. K., N. T. Foged, A. Bording, J. P. Nielsen, H. K. Riemann, and P. L. Frandsen. 1991. Recombinant derivatives of Pasteurella multocida toxin: candidates for a vaccine against progressive atrophic rhinitis. Infect Immun 59(4):1387-1393.
Petrocchi-Rilo, M., C. B. Gutiérrez-Martín, J. I. Méndez-Hernández, E. F. Rodríguez-Ferri, and S. Martínez-Martínez. 2019. 3Antimicrobial resistance of Pasteurella multocida isolates recovered from swine pneumonia in Spain throughout 2017 and 2018. Veterinary and Animal Science 7:100044. doi: https://doi.org/10.1016/j.vas.2018.100044 Pijoan, C. 2006. Pneumonic pasteurellosis. Ames, Iowa State University Press, Diseases of Swine, 9th edn.
Pors, S. E., M. S. Hansen, H. Christensen, H. E. Jensen, A. Petersen, and M. Bisgaard. 2011. Genetic diversity and associated pathology of Pasteurella multocida isolated from porcine pneumonia. Veterinary Microbiology 150(3-4):354-361. doi: 10.1016/j.vetmic.2011.02.050 Praveena, P. E., S. Periasamy, A. A. Kumar, and N. Singh. 2014. Pathology of experimental infection by Pasteurella multocida serotype A: 1 in buffalo calves. Vet Pathol 51(6):1109-1112. doi: 10.1177/0300985813516647 Rhoades, K. R., and R. B. Rimler. 1987. Capsular groups of Pasteurella multocida isolated from avian hosts. Avian Dis 31(4):895-898.
Rimler, R. B., and J. R. Glisson. 1997. Fowl cholera. Ames, Iowa State University Press., Diseases of poultry.
Risco, D., P. Fernandez-Llario, J. M. Cuesta, W. L. Garcia-Jimenez, M. Gil, P. Goncalves, R. Martinez, L. Gomez, A. Garcia, J. Rey, M. Hermoso-de-Mendoza, and J. Hermoso-de-Mendoza. 2013. Fatal outbreak of systemic pasteurellosis in a wild boar (Sus scrofa) population from southwest Spain. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation 25(6):791-794. (Article) doi: 10.1177/1040638713504411 Ross, R. F. 2006. Pasteurella multocida and its role in porcine pneumonia. Animal health research reviews / Conference of Research Workers in Animal Diseases 7(1-2):13-29. (; Review) doi: 10.1017/s1466252307001211 Rutter, J. M. 1985. Atrophic rhinitis in swine. Adv Vet Sci Comp Med 29:239-279.
Sarangi, L. N., P. Thomas, S. K. Gupta, A. Priyadarshini, S. Kumar, V. K. Nagaleekar, A. Kumar, and V. P. Singh. 2015. Virulence gene profiling and antibiotic resistance pattern of Indian isolates of Pasteurella multocida of small ruminant origin. Comp Immunol Microbiol Infect Dis 38:33-39. doi: 10.1016/j.cimid.2014.11.003 Shivachandra, S. B., K. N. Viswas, and A. A. Kumar. 2011. A review of hemorrhagic septicemia in cattle and buffalo. Animal health research reviews / Conference of Research Workers in Animal Diseases 12(1):67-82. (; Review) doi: 10.1017/s146625231100003x Shivachandra, S. B., R. Yogisharadhya, A. Kumar, N. N. Mohanty, and V. K. Nagaleekar. 2015. Recombinant transferrin binding protein A (rTbpA) fragments of Pasteurella multocida serogroup B:2 provide variable protection following homologous challenge in mouse model. Research in veterinary science 98:1-6. doi: 10.1016/j.rvsc.2014.11.013 Singh, B., S. Prasad, M. Verma, and S. D.K. 2014. Estimation of Economic Losses due to Haemorrhagic Septicaemia in Cattle and Buffaloes in India. Agricultural Economics Research Review 27:271-279.
Soike, D., C. Schulze, P. Kutzer, B. Ewert, E. van der Grinten, A. Schliephake, C. Ewers, A. Bethe, and J. Rau. 2012. Acute pasteurellosis in fallow deer, cattle and pigs in a region of Eastern Germany. Berliner Und Munchener Tierarztliche Wochenschrift 125(3-4):122-128. (Article) doi: 10.2376/0005-9366-125-122 Tang, X., Z. Zhao, J. Hu, B. Wu, X. Cai, Q. He, and H. Chen. 2009. Isolation, antimicrobial resistance, and virulence genes of Pasteurella multocida strains from swine in China. J Clin Microbiol 47(4):951-958. doi: 10.1128/JCM.02029-08 Timsit, E., J. Hallewell, C. Booker, N. Tison, S. Amat, and T. W. Alexander. 2017. Prevalence and antimicrobial susceptibility of Mannheimia haemolytica, Pasteurella multocida, and Histophilus somni isolated from the lower respiratory tract of healthy feedlot cattle and those diagnosed with bovine respiratory disease. Vet Microbiol 208:118-125. doi: 10.1016/j.vetmic.2017.07.013 Townsend, K. M., A. J. Frost, C. W. Lee, J. M. Papadimitriou, and H. J. Dawkins. 1998a. Development of PCR assays for species- and type-specific identification of Pasteurella multocida isolates. J Clin Microbiol 36(4):1096-1100.
Townsend, K. M., D. O'Boyle, T. T. Phan, T. X. Hanh, T. G. Wijewardana, I. Wilkie, N. T. Trung, and A. J. Frost. 1998b. Acute septicaemic pasteurellosis in Vietnamese pigs. Veterinary Microbiology 63(2-4):205-215. doi: 10.1016/s0378-1135(98)00233-8 Ujvári, B., L. Szeredi, L. Pertl, G. Tóth, K. Erdélyi, S. Jánosi, T. Molnár, and T. Magyar. 2015. First detection of Pasteurella multocida type B:2 in Hungary associated with systemic pasteurellosis in backyard pigs. Acta Vet Hung 63(2):141-156. doi: 10.1556/AVet.2015.012 Vera-Lizarazo, Y. A. 2009. Caracterización fenotípica y molecular de cepas de "Pasteurella multocida" aisladas de lesiones neumónicas porcinas., Universidad de León.
Verma, N. D. 1988. PASTEURELLA-MULTOCIDA B-2 IN HEMORRHAGIC SEPTICEMIA OUTBREAK IN PIGS IN INDIA. Veterinary Record 123(2):63-63.
Verma, R., and T. N. Jaiswal. 1998. Haemorrhagic septicaemia vaccines. Vaccine 16(11-12):1184-1192.
Verma, S., M. Sharma, S. Katoch, L. Verma, S. Kumar, V. Dogra, R. Chahota, P. Dhar, and G. Singh. 2013. Profiling of virulence associated genes of Pasteurella multocida isolated from cattle. Vet Res Commun 37(1):83-89. doi: 10.1007/s11259-012-9539-5 Volker, I., W. Kehler, M. Hewicker-Trautwein, F. Seehusen, J. Verspohl, S. Bilk, and W. Baumgartner. 2014. Re-emergence of haemorrhagic septicaemia in ungulates in Lower-Saxony in Germany. Vet Rec 175(18):460. doi: 10.1136/vr.102706 Wheeler, R. 2009. Outer membrane proteomics of Pasteurella multocida isolates to identify putative host-specificity determinants. Bioscience Horizons: The International Journal of Student Research 2(1):1-12 %@ 1754-7431. doi: 10.1093/biohorizons/hzp002 Walsh, C., and S. Fanning. 2008. Antimicrobial resistance in foodborne pathogens--a cause for concern? Curr Drug Targets 9(9):808-815.
WHO. 2015. Global action plan on antimicrobial resistance. http://www.wpro.who.int/entity/drug_resistance/resources/global_action_plan_eng.pdf.
WHO. 2016. Critically important antimicrobials for human medicine, 5th revision. https://www.who.int/foodsafety/publications/antimicrobials-fifth/en/.
WHO. 2018. Antimicrobial resistance. https://www.who.int/antimicrobial-resistance/en/.
Wilson, B. A., and M. Ho. 2013. Pasteurella multocida: from zoonosis to cellular microbiology. Clin Microbiol Rev 26(3):631-655. doi: 10.1128/cmr.00024-13
© 2001-2024 Fundación Dialnet · Todos los derechos reservados