Coloraciones para visualizar el proceso odontoblástico

• Autores: Alicia Kohli Bordino, Graciela Postiglione, Leonor Poletto
• Localización: Revista de la Asociación Odontológica Argentina, ISSN 2683-7226, Vol. 92, Nº. 3, 2004, págs. 229-233
• Idioma: español
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• Resumen
  • español

    El complejo pulpodentinario comparte una célula llamada odontoblasto, con un cuerpo ubicado en la periferia de la pulpa dentaria y un proceso o prolongación que se introduce dentro de los canalículos dentinarios, aislado de la matriz peritubular por el espacio periodontoblástico. Investigaciones con microscopio electrónico de transmisión y microscopio electrónico de barrido consiguieron ubicar el proceso en piezas dentales humanas y de animales. Nuestro objetivo fue identificar el proceso desde su origen hasta el borde de la dentina. Utilizamos una combinación de técnicas conocidas para microscopio óptico y comparamos la eficacia de tres coloraciones. A 30 dientes extraídos por razones ortodónticas les hicimos un orificio hasta la pulpa, donde inyectamos 0,5 cm3 de formol al 10 por ciento y estandarizamos su división en partes iguales. Las mitades con pulpa se desmineralizaron en ácido nítrico al 8 por cienot, eliminamos las fibras colágenas con colagenasa tipo II y continuamos con la técnica de rutina para colorearlos con hematoxilina-eosina, PAS y Schmorl. Con el microscopio óptico a menor aumento comprobamos la conservación de la pulpa dental adherida a la dentina y a mayor aumento vimos el área de los odontoblastos y la prolongación en forma nítida. La técnica que modificamos para microscopio óptico brindó resultados comparables a los obtenidos con microscopio electrónico. La coloración de hematoxilina-eosina fue mejor para estudiar el área de los odontoblastos y el nacimiento de los procesos.

  • English

    The pulpodentinary complex shares a cell called the odontoblast, with a body located on the periphery of the dental pulp and a process or prolongation that is inserted inside the dental canalicles, isolated from the peritubular matrix by the periodontoblastic space. Investigations with transmission electronic microscope and scrubbing electronic Microscopy managed to locate the process in human and animal tooth parts. Our goal was to identify the process from its origin to the edge of the dentin. We used a combination of known techniques for optical microscope and compared the effectiveness of three coloring. To 30 teeth extracted for orthodontic purposes we made a hole to the pulp, where we injected 0.5 cm3 of 10 percent formol and standardized their division into equal parts. Halves with pulp were demineralized into nitric acid at 8 per cenot, we removed the collagen fibers with collagenase type II and continued with the routine technique to color them with hematoxyline-eosine, PAS and Schmorl. With the optical microscope at lower increase we checked the preservation of the dental pulp attached to the dentin and at higher increase we saw the area of the odontoblasts and the prolongation in a sharp form. The technique that we modified for optical microscope produced results comparable to those obtained with electronic microscopy. Hematoxyline-eosine coloring was best for studying the area of odontoblasts and the birth of processes.