Resumen de Detección de bacterias benéficas en suelo con banano (musa aaa simmonds) cultivar gran enano y su potencial para integrar un biofertilizante

Y. Córdova-Bautista, M.C. Rivera-Cruz, Ronald Ferrera Cerrato, José Jesús Obrador Olán, Víctor Córdova Ávalos

• español

  Se determinaron las densidades de bacterias totales fijadoras de N de vida libre en suelo hasta 110 cm de profundidad y en suelo rizosférico de la planta de banano establecido en un Fluvisol éutrico. Se colectaron muestras de suelo en los seis horizontes del perfil y en 30 puntos de muestreo rizosférico (0-10 cm de profundidad) distribuidos en forma aleatoria en 10 000 m2. Las poblaciones de Azospirillum y Azotobacter se aislaron hasta profundidades de 59 y 110 cm, respectivamente. Los gremios aislados más grandes fueron 42x104 y 11x105 UFC g..1 de suelo seco para Azospirillum y Azotobacter, respectivamente. Tres aislados de Azospirillum y tres de Azotobacter se utilizaron en la formulación de inoculantes microbianos sostenidos en soportes orgánicos (pollinaza, pollinaza + suelo, pinzote, pinzote + suelo) y en suelo testigo. Se establecieron dos bioensayos integrados con 10 tratamientos cada uno durante 60 días de incubación. Las densidades se contaron los días 1, 30 y 60, y el nitrógeno total se cuantificó el día 60. Azospirillum creció mejor en pinzote + inóculo con 15x105 UFC por cada gramo de biofertilizante mientras que para Azotobacter fue 63x104 UFC en pinzote + suelo + inóculo. El mayor contenido de nitrógeno total fue 5.25 %, fue liberado en el suelo con pollinaza y bioaumentado con el consorcio Azospirillum + Azotobacter; no obstante, las poblaciones de Azospirillum y Azotobacter disminuyeron a 68x104 y 20x104 UFC g..1 de biofertilizante, respectivamente.

• English

  The densities of free living total N-fixing bacteria in soil down to a depth of 110 cm and in rhizospheric soils of banana plants established in a eutric Fluvisol, were evaluated. Soil samples were collected from the six horizons of the profile and from 30 rhizospheric sampling points (0-10 cm depth) randomly distributed throughout 10 000 m2. Populations of Azospirillum and Azotobacter were isolated at depths of 59 and 110 cm, respectively. The largest isolates were 42x104 and 11x105 CFU g..1 of dry soil for Azotobacter and Azospirillum, respectively. Three isolates of Azospirillum and Azotobacter each were used in the formulation of sustained microbial inoculants in organic media (chicken manure, chicken manure + soil, rachis of banana raceme, rachis of banana raceme + soil) and in control soil.

  Two integrated bioassays with 10 treatments each were established for 60 days of incubation. Densities were counted on days 1, 30 and 60, and total nitrogen was quantified on day 60. Azospirillum grew best on rachis of banana raceme + consortium with 15x105 CFU per gram of biofertilizer, whereas Azotobacter grew best on 63x104 CFU per gram of the biofertilizer formulated with rachis of banana raceme + soil + consortium. The greatest total nitrogen content was 5.25% released into the soil with chicken manure and bioaugmented with the Azospirillum + Azotobacter consortium.

  However, the Azospirillum and Azotobacter populations decreased to 68x104 and 20x104 CFU g..1 of biofertilizer, respectively.