Review: methodologies for transferring DNA into eukaryotic microalgae

• Autores: J. M. Coll
• Localización: Spanish journal of agricultural research, ISSN-e 2171-9292, ISSN 1695-971X, Nº. 4, 2006, págs. 316-330
• Idioma: inglés
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• Resumen
  • español

    Se utilizan tres métodos para transferir y expresar genes exógenos en algas unicelulares eucarióticas (microalgas): la agitación con microesferas de vidrio, la electroporación y el bombardeo con micropartículas. La mayoría de los investigadores usan microesferas de vidrio y, en menor frecuencia, la electroporación para transformaciones nucleares, mientras que el bombardeo se usa casi siempre para transformaciones de cloroplastos. Mientras que tanto las microesferas de vidrio como la electroporación requieren la ausencia de paredes celulares, el bombardeo se puede efectuar en microalgas intactas. Se han descrito transformantes principalmente en Chlamydomonas reinhardtii, pero también en Volvox carteri, Chlorella spp., Dunaliella salina, Haematococcus pluvialis, Euglena gracilis, diatomeas (Phaeodactylum tricornutum, Navicula saprophila, Cyclotella cryptica y Thalassiosira weissflogii), dinoflagelados (Amphidinium klebsii y Symbiodinium microadriaticum) y algas rojas (Porphyridium spp. y Cyanidioschyzon merolae). Además, se han obtenido los primeros transformantes de C. reinhardtii usando Agrobacterium tumefaciens. El estudio comparativo de las principales variables de los tres métodos puede ayudar a la transformación de nuevas especies de microalgas.

  • English

    Agitation with glass beads, electroporation and microparticle bombardment are all used to transfer exogenous genes into unicellular eukaryotic algae (microalgae). For nuclear transformation most researchers use glass beads techniques or, to a lesser extent, electroporation, while for chloroplast transformation bombardment is often used. Glass bead agitation and electroporation require the removal of the cell wall while bombardment can be performed with intact microalgae. Chlamydomonas reinhardtii has been the microalga most commonly transformed, but success has also been reported with Volvox carteri, Chlorella spp., Dunaliella salina, Haematococcus pluvialis, Euglena gracilis, diatoms (Phaeodactylum tricornutum, Navicula saprophila, Cyclotella cryptica and Thalassiosira weissflogii), dinoflagellates (Amphidinium klebsii and Symbiodinium microadriaticum) and red algae (Porphyridium spp and Cyanidioschyzon merolae). The first C. reinhardtii transformants produced by making use of Agrobacterium tumefaciens have also been reported. A comparison of the above methods might help provide the information necessary to successfully transform further microalgal species.