Cordoba, España
Los residuos del espárrago constituyen una fuente importante de compuestos bioactivos (fenoles y saponinas) tóxicos para patógenos de suelo, como Phytophthora cinnamomi, principal causante de la Seca de los Quercus. El principal objetivo de este trabajo fue determinar la actividad biocida frente a P. cinnamomi de tres extractos ricos en compuestos fitoquímicos procedentes de residuos del cultivo del espárrago (tallos, frondes y raíces). Mediante experimentos in vitro se determinó el efecto de estos tres extractos a la dosis de 0,05% para inhibir la capacidad infectiva (producción de esporangios) de P. cinnamomi. Todos los extractos alcanzaron una inhibición superior al 50%, destacando el extracto de tallos de espárrago con un 95% de inhibición. Además, ensayos in vivo determinaron la actividad de estos extractos a la misma dosis sobre la capacidad de supervivencia del patógeno. Dos semanas tras la aplicación de los extractos a un sustrato previamente infestado con clamidosporas de P. cinnamomi, se observó una disminución significativa de la densidad de esporas viables en todos los tratamientos respecto al testigo sin tratar. En este momento, se trasplantaron plántulas de Lupinus luteus para evaluar el efecto sobre el desarrollo de la enfermedad radical. Tras seis semanas de incubación, las plántulas que crecieron en sustrato tratado con tallos de espárrago presentaron síntomas radicales significativamente menores que las que lo hicieron en sustrato no tratado e infestado. Estos resultados demuestran consistentemente la efectividad del extracto de tallos de espárrago para controlar la infectividad, supervivencia y desarrollo de la enfermedad radical causada por P. cinnamomi.
Asparagus waste constitutes a significant source of bioactive compounds (phenols and saponins) that are toxic to soil pathogens such as Phytophthora cinnamomi, the primary cause of Oak Decline. The main objective of this study was to determine the biocidal activity against P. cinnamomi of three extracts rich in phytochemical compounds from asparagus crop residues (stems, fronds, and roots). Through in vitro experiments, the effect of these three extracts at a dose of 0.05% was determined to inhibit the infective capacity (sporangia production) of P. cinnamomi. All extracts achieved inhibition greater than 50%, with the asparagus stem extract showing 95% inhibition. Additionally, in vivo assays determined the activity of these extracts at the same dose on the pathogen's survival capacity. Two weeks after applying the extracts to a substrate previously infested with P. cinnamomi chlamydospores, a significant reduction in the density of viable spores was observed in all treatments compared to the untreated control. At this point, Lupinus luteus seedlings were transplanted to evaluate the effect on root disease development. After six weeks of incubation, seedlings growing in substrate treated with asparagus stems showed significantly fewer root symptoms than those growing in untreated infested substrate. These results consistently demonstrate the effectiveness of asparagus stem extract in controlling the infectivity, survival, and development of root disease caused by P. cinnamomi.
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