Resumos

ARTIGOS CIENTÍFICOS

MICROBIOLOGIA

Expressão diferencial de proteínas do fungo Conidiobolus lamprauges cultivado em diferentes temperaturas

Differential expression of protein of the fungus Conidiobolus lamprauges cultivated at different temperatures

Isabela de Godoy^I; Daphine Ariadne Jesus de Paula^I; Marcelo Marques da Silveira^I; Laila Natasha dos Santos Brandão^I; Valéria Dutra^I; Luciano Nakazato^I,1 1 Autor para corresppondência.

^ILaboratório de Microbiologia Veterinária e Biologia Molecular, Universidade Federal de Mato Grosso (UFMT), 78060-900, Cuiabá, MT, Brasil. E-mail: lucnak@ufmt.br

RESUMO

Para sobreviverem na temperatura corpórea de seu hospedeiro, os fungos patogênicos têm desenvolvido mecanismos moleculares importantes, como a expressão de proteínas relacionadas ao crescimento em altas temperaturas. Assim, o objetivo deste trabalho foi analisar o crescimento in vitro de Conidiobolus lamprauges em diferentes temperaturas e comparar o perfil de proteínas expressas através de eletroforese bidimensional (2D), em duas temperaturas distintas, sendo uma considerada baixa (28°C) e alta (37°C). Para análise do crescimento em diferentes temperaturas, cinco isolados de C. lamprauges, oriundos de ovinos doentes, foram incubados a 20, 25, 30, 35 e 40°C e o crescimento radial foi medido a cada 24 horas. Para análise da expressão diferencial, realizou-se a extração de proteínas do fungo cultivado a 28°C e a 37°C por 48 horas. A média de crescimento radial dos isolados foi diferente nas temperaturas analisadas, sendo 35°C a melhor temperatura para crescimento em todas as amostras. A temperatura ótima ajustada variou entre 33,3°C a 34,8°C. Os limites inferior e superior de inibição de crescimento foram 18°C e 42°C, respectivamente. Na análise da expressão diferencial, foram encontrados 16 spots diferencialmente expressos, sete (7/16) estavam com expressão diminuída e nove (9/16) com expressão aumentada a 37°C, quando comparado a 28°C. Além disso, oito spots estavam presentes apenas a 28°C e seis a 37°C. Sugere-se que C. lamprauges produza um perfil de proteínas relacionadas à termorregulação desencadeado pela alta temperatura do hospedeiro.

Palavras-chaves: temperatura de crescimento, ovinos, proteína, Zigomiceto.

ABSTRACT

To survive at the body temperature of their hosts, pathogenic fungi have developed important molecular mechanisms, such as protein expression associated with growth at high temperatures. Thus, the aim of this study was to analyze the in vitro growth of Conidiobolus lamprauges at different temperatures and compare proteins expressed by two-dimensional electrophoresis (2D), for the pathogen cultivated at low (28°C) and high (37°C) temperatures. For the analysis of growth temperatures, five isolates of C. lamprauges from sick sheep were incubated at 20, 25, 30, 35 and 40°C and radial growth was measured every 24 hours. For the analysis of differential expression, protein extraction and two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis were performed with C. lamprauges cultivated at 28°C and 37°C for 48 hours. The average radial growth was different at the temperatures tested, and 35°C was found to be the best growth temperature for all isolates. The optimum adjusted temperature ranged between 33.3°C and 34.8°C. The upper and lower limits of growth inhibition were 18°C and 42°C, respectively. Upon expression analysis, a total of 16 spots were differentially expressed, seven (7/16) proteins were downregulated and nine (9/16) were over-expressed at 37ºC compared to 28°C. In addition, eight spots were present only at 28ºC and six were present only at 37ºC. It is suggested that C. lamprauges produces a profile of proteins that is related to thermoregulation triggered by the high temperature of the host.

Key-words: growth temperature, sheep, protein, Zygomycete.

INTRODUÇÃO

Conidiobolus coronatus, C. incongrus e C. lamprauges, pertencentes à ordem Entomophtorales (RIBES et al., 2000), são as principais espécies envolvidas na Conidiobolomicose. Esses fungos são capazes de causar micoses cutâneas e subcutâneas em humanos e animais (RIBES et al., 2000; BOABAID et al., 2008; KIMURA et al., 2011). A patogenia dessa enfermidade não está bem esclarecida. Os estudos estão voltados principalmente à virulência de Conidiobolus spp. como controle biológico de insetos (SHAH & PELL, 2003), sendo a espécie C. coronatus a mais citada.

Microrganismos patogênicos são capazes de sobreviver na temperatura fisiológica do seu hospedeiro a fim de proliferar e causar a doença (KRAUS et al., 2004). Conidiobolus spp. tem ótimo crescimento a 37°C (RIBES et al., 2000). Cepas isoladas de humanos infectados crescem mais rapidamente a 37°C que aquelas isoladas do ambiente, sugerindo que a temperatura possa estar associada à produção de algum fator de virulência (RIBES et al., 2000).

A faixa ótima de temperatura varia entre as espécies e as mudanças térmicas podem causar alterações nas propriedades estruturais e fisiológicas dos organismos (RIBEIRO, 2010). Para se adaptar à temperatura corpórea do hospedeiro, microrganismos desenvolvem mecanismos moleculares importantes, como superexpressão ou repressão de genes, resultando na produção de proteínas e fatores transcricionais que possivelmente estão associados à patogenia da enfermidade e à virulência do fungo (ROSA E SILVA et al., 2008).

Uma forma de entender melhor o funcionamento dos genes é através da proteômica, a qual analisa o produto final do genoma. A identificação de proteínas pode auxiliar no entendimento de características relacionadas à patogênese da doença, em novos diagnósticos e tratamentos e vacinas (GALDOS-RIVEROS et al., 2010). Não há estudos na literatura que mostrem perfis proteicos e/ou identifiquem proteínas produzidas pelo Conidiobolus spp. na conidiobolomicose ovina e nem que relacionam o efeito da temperatura no comportamento de tal fungo a nível molecular. Assim, o objetivo deste trabalho foi caracterizar o crescimento do C. lamprauges em diferentes temperaturas e comparar, através da expressão diferencial de proteínas, o patógeno cultivado em duas temperaturas distintas, uma considerada baixa e outra alta, selecionadas após os resultados obtidos no experimento de caracterização do crescimento de C. lamprauges.

MATERIAL E MÉTODOS

Para a análise do crescimento em diferentes temperaturas, foram utilizados cinco isolados de C. lamprauges M290/07 (INCQS 40316), M303/07 (INCQS 40317), M260/09 (INCQS 40315), M614/09 (INCQS 40319) e M446/10 (INCQS 40318), oriundos de ovinos doentes, caracterizados e confirmados pela técnica de PCR (PAULA et al., 2010) e mantidos no laboratório de Microbiologia Veterinária.

Os cinco isolados foram semeados em Agar Sabouraud Dextrose (SDA) 2% e incubados a 37°C por sete dias. Após o cultivo, foi realizada a suspensão de esporos com auxílio de alça do tipo Drigalski em 3,0ml de solução estéril de Tween 80 a 0,01% (v/v). A suspensão obtida foi lavada com água ultrapura estéril, centrifugada a 3354 x g por 17 minutos e o pellet ressuspendido em 1ml de água ultrapura estéril. Os esporos foram contados em câmera de Neubauer e diluídos até uma concentração de 10⁶ esporosmL^-1.

No centro de cada placa de Petri (14,0x1,5cm) com SDA 2%, foram inoculados 10µl (104 esporos) da suspensão de esporos, sendo feitas triplicatas para cada isolado. As placas foram incubadas em cinco diferentes temperaturas (20, 25, 30, 35 e 40°C) e o crescimento radial dos fungos foi medido a cada 24 horas, sendo realizado por meio de uma régua graduada. As medidas foram realizadas sempre no mesmo local de mensuração, até que os isolados atingissem a proximidade das bordas da placa de Petri, o que levou aproximadamente cinco dias. Os isolados foram também cultivados com ±2°C (18 e 42°C) das temperaturas acima para detectar o limite inferior e superior de crescimento.

O delineamento experimental utilizado foi inteiramente casualizado, em que os tratamentos corresponderam às combinações dos cinco isolados de C. lamprauges com as cinco condições de temperatura testadas, obtendo um total de 25 tratamentos. Cada tratamento foi composto por três repetições, sendo cada repetição correspondente a uma placa de Petri, totalizando 75 placas. Os dados foram submetidos à Análise de variância e as médias foram comparadas pelo teste de Scott-Knott, com nível de significância de 5%.

Para a análise de expressão diferencial, o isolado INCQS 40316, anteriormente utilizado para análise de transcritos diferencialmente expressos (SILVA et al., 2012), foi cultivado em SDA 2% e mantido em incubadora tipo B.O.D. (Química Nova) a 28 e 37°C, por 48 horas. Após o cultivo, as amostras foram submetidas à extração de proteínas, segundo protocolo adaptado de WINTERS et al. (2008) e, posteriormente, homogeneizadas em tampão de extração gelado, suplementado com inibidores de proteases. A quantificação foi realizada pelo método de Bradford (BRADFORD, 1976).

Os géis bidimensionais (2-D) foram realizados segundo protocolo modificado de O'FARREL (1975) e RABILLOUD (1998), em triplicata. Amostras contendo aproximadamente 250µg de proteínas foram precipitadas com solução de TCA:Acetona (1:9), solubilizadas em tampão de reidratação e aplicadas em fitas Zoom® Strip pH 3-10L (7cm, Bio-rad) para a realização da primeira dimensão. Após a focalização isoelétrica, realizada em sistema IPGRunner (Invitrogen), as fitas foram reduzidas com 1% de DTT e alquiladas em 2,5% de iodoacetamida em tampão de equilíbrio (BJELLQVIST et al., 1993).

A segunda dimensão foi feita em gel de poliacrilamida, segundo LAEMMLI (1970), e corada por Nitrato de prata (WESTERMEIER & NAVEN, 2002). As imagens dos géis foram capturadas e processadas em sistema de fotodocumentação (ChemiDoc XRS+, Bio-Rad). A análise quantitativa dos géis foi realizada por meio do software PDQuest 8.0.1 (Bio-Rad), adotando-se o método estatístico de regressão local para normalização dos spots.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os isolados apresentaram diferenças significativas no seu crescimento radial quando comparados entre si em uma mesma temperatura e em diferentes temperaturas (Tabela 1). Dessa maneira, ocorreu um efeito significativo para a interação entre temperatura e crescimento dos isolados (P<0,0001), com nível de significância de 5%. O teste de médias (Tabela 1) mostrou que o isolado INCQS 40319 apresentou a maior média em todas as temperaturas testadas. O isolado INCQS 40316, no entanto, apresentou um menor crescimento radial entre os isolados, independente da temperatura testada.

A análise do crescimento dos isolados em diferentes temperaturas demonstrou, por meio do teste de regressão, que os isolados apresentaram média de crescimento crescente nas temperaturas de 20 até 35°C. A temperatura ótima de crescimento de cada isolado variou entre 33,3 a 34,8°C (Tabela 1), baseado na equação descrita para cada isolado. O crescimento foi inibido completamente quando incubado a 18 e 42°C.

A maioria dos fungos de importância clínica apresenta temperatura ótima de isolamento e crescimento de 25 a 30°C, mas, em alguns fungos subcutâneos e sistêmicos dimórficos, como Histoplasma capsulatum, Blastomyces dermatitidis e Sporothrix schenckii, é de 37°C (DISMUKES et al., 2003). Em alguns casos, a capacidade de crescimento de fungos acima de 40°C denomina-se termotolerância (WALKER & WHITE, 2005).

Os resultados observados neste estudo estão de acordo com análises realizadas com Aspergillus flavus (GADGILE & CHAVAN, 2010), as quais mostraram uma temperatura ótima de crescimento in vitro de 35°C. WAINGANKAR et al. (2008) descreveram uma nova espécie, Conidiobolus thermophilus, o qual teve um ótimo desenvolvimento a 40°C, sem importância clínica, mas com possíveis aplicações biotecnológicas.

Em relato de infecção causada por C. lamprauges em um homem de 61 anos, tal fungo foi cultivado em cinco temperaturas distintas, sendo observado o maior diâmetro de crescimento a 36,5°C e cultura negativa a 45 e 50°C (KIMURA et al., 2011). Esses dados são diferentes dos obtidos neste estudo com isolados de ovinos doentes, cuja temperatura ótima ficou entre 33 e 35°C, com a inibição do crescimento obtida a partir de 42°C. As diferenças desses resultados podem estar associadas ao fato de as temperaturas utilizadas por KIMURA et al. (2011) terem um intervalo grande, não sendo testadas temperaturas como, por exemplo, 35°C e não ser realizada uma análise de regressão.

Em relação a organismos capazes de causar lesões no trato respiratório superior de ovinos, houve discordância quando comparado a um estudo que analisou o efeito da temperatura no crescimento de Pythium insidiosum (KRAJAEJUN et al., 2010), sendo observada uma temperatura ótima entre 28 e 32°C e inibição do crescimento a 8 e 42°C.

Embora C. lamprauges ocorra no mundo todo, a doença é comum em regiões de clima tropical e subtropical (CARRIGAN et al., 1992), onde a média de temperatura é consideravelmente alta, o que pode explicar a elevada faixa ótima de temperatura de crescimento encontrada neste estudo. Além disso, o fungo em questão parasita hospedeiros cujas temperaturas corporais são altas: 37°C (humano) e 39°C (ovinos), entre outros. Dessa forma, o microrganismo deve ser capaz de expressar genes relacionados à infecção, o que altera a regulação gênica e permite a adaptação ao hospedeiro a fim de causar a doença, como ocorre em Aspergillus fumigatus, Cryptococcus neoformans, Paracoccidioides brasiliensis.

Na análise de expressão diferencial, 51 spots foram encontrados na condição de 28°C e 49 spots a 37°C, sendo 16 spots diferencialmente expressos, dos quais sete (7/16) estavam com expressão diminuída e nove (9/16) com expressão aumentada a 37°C, quando comparado a 28°C (Tabela 2). Além disso, oito spots estavam presentes apenas a 28°C e seis presentes apenas a 37°C (Figura 1).

Em estudo de proteômica comparativa entre A. fumigatus e A. lentulus, observaram-se diferenças significativas de acordo com a temperatura de cultivo, sendo encontradas 20 proteínas superexpressas a 37°C, quando comparado a 25°C (PINEL et al., 2011). A ocorrência de 50 proteínas superexpressas foi detectada em A. fumigatus, utilizando uma técnica mais sensível a 2D-DIGE (ALBRECHT et al., 2010). Tem sido demonstrado que a superexpresão de algumas proteínas em A. fumigatus, através de mutantes nulos, é necessária para a termotolerância, virulência e manutenção na natureza (BHABHRA et al., 2004).

Alguns genes essenciais para o crescimento a 37°C têm sido identificados em C. neoformans (ROSA E SILVA et al., 2008; KRAUS et al., 2004), os quais estão relacionados com a virulência do patógeno. No fungo dimórfico P. brasiliensis, foram encontrados genes superexpressos durante a transição de micélio para levedura (MONTEIRO et al., 2009; GARCIA et al., 2010), fato que está diretamente relacionado com a mudança de temperatura.

Proteínas como Ras1, a p21, Ste20 kinase, Cts1, Vph1, Tsa1, Mpk1, e a Ca2/calmodulin-dependent phosphatase calcineurin foram identificadas em C. neoformans como sendo essenciais ou importantes ao crescimento em altas temperaturas (KRAUS et al., 2004). Recentemente, foi descrito, por meio da técnica de RDA, a expressão diferencial por C. lamprauges do gene que codifica a enolase, sendo que a exposição à temperatura elevada (37°C) possivelmente esteja associada à superexpressão dessa proteína (SILVA et al., 2012).

A identificação dessas proteínas poderá auxiliar na descoberta de características relacionadas à patogênese da doença, na regulação térmica, na descoberta de novos diagnósticos e tratamentos e vacinas.

CONCLUSÃO

Sugere-se que C. lamprauges produza um perfil de proteínas relacionadas à termorregulação para se adaptar ao ambiente do hospedeiro, sendo necessários outros estudos utilizando ferramentas moleculares para identificá-las e que possam contribuir para melhor entendimento da patogenia e virulência do fungo.

AGRADECIMENTOS

À fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de Mato Grosso (FAPEMAT) e ao Conselho Nacional de desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq), pelo apoio financeiro.

Recebido 18.02.13

Aprovado 01.09.13

Devolvido pelo autor 16.12.13

CR-2013-0214.R2

Datas de Publicação

Histórico